Animali da laboratorio. Da materiali aggiuntivi

A causa del fatto che i virus possono riprodursi solo nelle cellule viventi, nelle prime fasi dello sviluppo della virologia, è stata ampiamente utilizzata la coltivazione di virus nel corpo di animali da laboratorio, allevati appositamente per la ricerca su di essi.

Utilizzato: 1) per rilevare il virus nel PM 2) isolamento primario del virus dal PM 3) accumulo della massa virale 4) mantenimento del virus in laboratorio in uno stato attivo. 5) titolazione del virus 6) come oggetto da testare a pH 6) ottenimento di sieri iperimmuni. Animali utilizzati: topi bianchi (rabbia, afta epizootica), ratti bianchi (influenza suina, malattia di Aujeszky), porcellini d'India (rabbia, afta epizootica, cimurro). Conigli (rabbia, mixomi di coniglio).

Requisiti per gli animali da laboratorio: l'animale deve essere sensibile a questo virus; la sua età è di grande importanza per la coltivazione di molti virus. La maggior parte dei virus si riproducono meglio nel corpo degli animali giovani e persino appena nati; la sensibilità standard si ottiene selezionando animali di una certa età e dello stesso peso. In termini di sensibilità, i cosiddetti animali lineari ottenuti come risultato di consanguineità nel corso di più generazioni presentano lo standard più elevato; gli animali da laboratorio devono essere sani. Gli animali che entrano nel vivaio del laboratorio di virologia devono provenire da un allevamento esente da malattie infettive. Sono tenuti in quarantena e sottoposti a osservazione clinica. Se c'è una malattia, vengono distrutti.

Gli animali sono sistemati in modo tale da garantire, da un lato, il funzionamento di tutti i sistemi corporei entro i limiti fisiologici e, dall'altro, di escludere la reinfezione reciproca e la diffusione dell'infezione oltre il vivaio. Diversi metodi di marcatura individuale vengono utilizzati per animali di specie diverse. Per gli animali di grossa taglia e i polli vengono utilizzate targhette metalliche con un numero stampato. Quando si utilizza un piccolo gruppo di animali in un esperimento e per un breve periodo di tempo, i peli possono essere tagliati con segni sulla schiena e sui fianchi. La marcatura dei topi bianchi e dei ratti bianchi può essere effettuata mediante amputazione delle singole dita sugli arti anteriori o posteriori. Viene spesso utilizzato il metodo di applicare macchie colorate sulla lana non pigmentata. Infezione degli animali da laboratorio.

  • 1. sottocutaneo - schiena.
  • 2. Intradermico - tallone
  • 3. Intramuscolare - coscia
  • 4. Per via endovenosa - nella coda (preliminarmente strofinata con acqua calda e spremuta)
  • 5. Per via intranasale: una goccia nel naso (viene prima somministrata un'anestesia con etere debole per prevenire gli starnuti)
  • 6. Interocerebrale: il cranio viene forato con cura con un ago, non premere, la goccia scompare da sola.

Tutte le superfici sono prelubrificate con alcool iodato.

Laboratorio di preparazione. animali (usando l'esempio di un topo bianco)

  • - La pelle è lubrificata con un disinfettante.
  • - Viene praticata un'incisione lungo la linea alba.
  • - Apertura dello sterno: i polmoni vengono prelevati e inseriti nel tubo n. 1
  • - Apertura della cavità addominale: il fegato, la milza, i reni vengono prelevati e posti nella provetta n. 2.
  • - Il cranio è aperto. Si preleva il cervello, si realizzano sezioni di 4 strati, i pezzi vengono posti su carta da filtro e le stampe vengono realizzate su vetro.

ANIMALI DA LABORATORIO


animali da laboratorio, animali allevati appositamente per la ricerca medica, veterinaria e biologica. Al tradizionale L. zh. includono topi bianchi, ratti bianchi, vari tipi di criceti, porcellini d'India, conigli, gatti, cani; ai ratti di cotone non tradizionali, arvicole, gerbilli, furetti, opossum, armadilli, scimmie, maialini, asini, marsupiali, pesci, anfibi, ecc. C'è un gruppo di uccelli da laboratorio (galline, piccioni, quaglie, ecc.) .). Tranne L. zh., gli esperimenti utilizzano animali domestici, molto spesso pecore e maiali. I produttori di sieri immunitari e diagnostici sono cavalli, asini, montoni e conigli. Negli esperimenti vengono utilizzati anche molti invertebrati (ad esempio la Drosophila) e protozoi.

L. zh. sono controllati da indicatori genetici, ambientali, morfologici e dallo stato di salute. Sono allevati in vivai speciali o in vivai presso istituzioni scientifiche. Quelli non lineari utilizzati nell'esperimento L. zh. deve avere un alto grado di eterozigosi. Quanto più piccola è la popolazione chiusa di animali non lineari allevati, tanto maggiore è il grado di aumento della consanguineità tra di loro. Per la ricerca vengono sempre più utilizzati animali omozigoti (inbred, lineari) allevati sulla base di una stretta consanguineità (Fig. 1). Si conoscono circa 670 ceppi di topi, 162 ceppi di ratti, 16 ceppi di porcellini d'India, 66 ceppi di criceti, 4 ceppi di gerbilli e 7 ceppi di polli. Ogni linea ha le sue caratteristiche nell'insieme di geni, sensibilità a vari antigeni e fattori di stress. Gli animali lineari vengono sistematicamente monitorati per l'omozigosi. Durante l'allevamento L. zh. ricevono 5 cucciolate di topi all'anno, in media 7 topi per figliata, rispettivamente nei ratti 5 e 7, nelle cavie 3 e 5, nei conigli 4 e 6. Premesse per L. zh.(vivari) devono essere altamente igienici, spaziosi, con un ricambio d'aria di 10 volte l'ora e un'umidità dell'aria del 5065%. Su 1 m 2 di area vengono posti 65 topi adulti o 240 topi giovani, 20 x 100 ratti, 30 x 40 criceti, 15 x 18 porcellini d'India, 3 x 4 conigli. In una gabbia non possono essere contenuti più di 15 topi, 10 ratti, 5 criceti e porcellini d'India e 1 coniglio. Almeno il 50% della superficie del vivaio è destinata ai locali di servizio. Per evitare lo scambio di agenti infettivi, non è consentito allevare specie diverse. L. zh. nella stessa stanza o gabbia. Topi, ratti, porcellini d'India e criceti vengono tenuti principalmente in vasche di plastica a forma di cono con coperchio a rete; conigli, cani, scimmie e uccelli in gabbie metalliche. Vassoi e gabbie sono posizionati su scaffalature di 1 x 6 livelli (Fig. 2), dotati di abbeveratoi automatici e alimentatori a bunker, e accuratamente lavati e disinfettati con mezzi fisici o chimici prima dell'uso. I bagni di topi e ratti vengono sostituiti settimanalmente con altri puliti. La rimozione dei rifiuti e il lavaggio vengono effettuati in un apposito locale dotato di appositi dispositivi o lavatrici. Si nutrono L. zh. mangime naturale o concentrati bricchettati in base al fabbisogno giornaliero sviluppato. Il mangime bricchettato viene posto negli alimentatori per diversi giorni. Servi L. zh. personale addestrato e sottoposto a visita medica.

L. zh. Molte malattie infettive sono caratteristiche: salmonellosi, listeriosi, stafilococcosi, vaiolo, diarrea virale, coriomeningite linfocitaria, coccidiosi, elmintiasi, micosi, infezioni trasmesse da zecche, ecc. Trasporto latente (specialmente nei ratti) di batteri e virus patogeni, forme nascoste di malattie infettive si riscontrano malattie ad eziologia poco studiata. Alcune infezioni L. zh. sono zooantroponosi. Prevenzione delle malattie L. zh. si basa sul rigoroso rispetto delle norme igienico-sanitarie, sulla massima disinfezione dell'ambiente (locali, aria, attrezzature, mangimi, lettiere, ecc.). La produzione è organizzata in alcuni paesi L. zh. senza specifici fattori patogeni, i cosiddetti animali SPF (vedi). Crescente necessità di L. zh. ha portato alla nascita della scienza del L. zh., che comprende genetica, ecologia, morfologia, fisiologia, patologia e altre sezioni, nonché l'allevamento speciale di animali da laboratorio. In molti paesi (USA, Gran Bretagna, Germania, Francia, URSS, ecc.) esistono centri scientifici corrispondenti, il cui lavoro è coordinato dal Comitato Internazionale per la Scienza delle Scienze L. zh.(YCLAS).

Letteratura:
Bashenina N.V., Guida all'allevamento e all'allevamento di nuove specie di piccoli roditori nella pratica di laboratorio. M., 1975;
Norme sanitarie per la progettazione, l'attrezzatura e la manutenzione delle cliniche biologiche sperimentali (vivarium), M., 1973.



Dizionario enciclopedico veterinario. - M.: "Enciclopedia sovietica". Il redattore capo V.P. Shishkov. 1981 .

Scopri cosa sono gli "ANIMALI DA LABORATORIO" in altri dizionari:

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    ANIMALI DA LABORATORIO- ANIMALI DA LABORATORIO, animali che prestano servizio in laboratori di vario tipo per scopi scientifici e pratici. L. zh. Dovrebbero essere quelli facilmente reperibili, ben mantenuti o allevati in laboratorio e, inoltre, adatti a modo loro... ... Grande Enciclopedia Medica

    Animali da laboratorio- animali utilizzati in esperimenti o esperienze scientifiche, test biologici, processi educativi, nonché nella produzione di prodotti biologici... Fonte: LEGGE MODELLO SUL TRATTAMENTO DEGLI ANIMALI (insieme alle RAZZE POTENZIALMENTE PERICOLOSE... ... Terminologia ufficiale

    ANIMALI DA LABORATORIO- usato scientificamente. scopo in biologia, medicina, medicina veterinaria, pp. x ve. A seconda dei compiti della scienza. Durante l'esperimento vengono selezionati i L. più adatti a questi scopi. Ciò tiene conto non solo del biol. caratteristiche del modulo che garantiscono semplicità e...

    Animali da laboratorio- animali da esperimento o sperimentali utilizzati nei laboratori per scopi scientifici e pratici. L. zh. deve essere sano, avere alcune caratteristiche specifiche (ad esempio, predisposizione alle infezioni oggetto di studio,... ... Grande Enciclopedia Sovietica

    Animali modello- * bestiame madelny * animali da laboratorio modello animale utilizzati per la ricerca scientifica, in particolare la ricerca medica, allo scopo di studiare le malattie umane ereditarie. Locanda. vr. circa 250 vengono utilizzati in medicina sperimentale... Genetica. Dizionario enciclopedico

    ANIMALI NEGLI ESPERIMENTI- utilizzo di animali nella ricerca biologica, fisiologica e medica, nei test di tossicità di vari prodotti e farmaci, in vari programmi educativi, ecc. Gli animali vengono macellati e poi esaminati... ... Enciclopedia di Collier

    Animali da laboratorio- (sperimentali) diverse specie di animali utilizzati nei laboratori per scopi scientifici e applicati. Attualmente nella medicina sperimentale vengono utilizzate circa 250 specie di animali vertebrati e invertebrati. Tradizionale per... ... Dizionario di microbiologia

    ANIMALI- (Animalia), il regno degli organismi viventi, una delle divisioni più grandi del sistema organico. pace. Probabilmente è sorto ca. 1 1,5 miliardi di anni fa nel mare sotto forma di cellule somiglianti a microscopiche. flagellati ameboidi aclorofilli. Piano Terra... Dizionario enciclopedico biologico

    Animali nello spazio- Gli esperimenti che avrebbero dovuto determinare se il volo spaziale umano fosse possibile iniziarono in URSS e negli Stati Uniti negli anni Quaranta e Cinquanta. La prima fase della ricerca biospaziale prevedeva ripetuti voli di cani, scimmie e altri animali su razzi ad alta quota... Enciclopedia dei giornalisti

Libri

  • Animali da laboratorio. Libro di testo, Stekolnikov Anatoly Aleksandrovich, Shcherbakov Grigory Gavrilovich, Yashin Anatoly Viktorovich, Il manuale contiene materiale su importanti rami della medicina veterinaria e della scienza animale, relativi al mantenimento, all'alimentazione e alle malattie degli animali da laboratorio. Presentato secondo metodi generalmente accettati, corrispondenti... Categoria: Veterinario Collana: Libri di testo per le università. Letteratura speciale Editore:

animali da laboratorio, animali allevati appositamente per la ricerca medica, veterinaria e biologica. Al tradizionale L. zh. includono topi bianchi, ratti bianchi, vari tipi di criceti, porcellini d'India, conigli, gatti, cani; ai ratti di cotone non tradizionali, arvicole, gerbilli, furetti, opossum, armadilli, scimmie, maialini, asini, marsupiali, pesci, anfibi, ecc. C'è un gruppo di uccelli da laboratorio (galline, piccioni, quaglie, ecc.) .). Tranne L. zh., gli esperimenti utilizzano animali domestici, molto spesso pecore e maiali. I produttori di sieri immunitari e diagnostici sono cavalli, asini, montoni e conigli. Vengono utilizzati sperimentalmente anche molti invertebrati (vermi, acari, insetti, come la Drosophila), nonché protozoi.

L. zh. sono controllati da indicatori genetici, ambientali, morfologici e dallo stato di salute. Sono allevati in vivai speciali o in vivai presso istituzioni scientifiche. Quelli non lineari utilizzati nell'esperimento L. zh. deve avere un alto grado di eterozigosi. Quanto più piccola è la popolazione chiusa di animali non lineari allevati, tanto maggiore è il grado di aumento della consanguineità tra di loro. Per la ricerca vengono sempre più utilizzati animali omozigoti (inbred, lineari) allevati sulla base di una stretta consanguineità (Fig. 1). Si conoscono circa 670 ceppi di topi, 162 ceppi di ratti, 16 ceppi di porcellini d'India, 66 ceppi di criceti, 4 ceppi di gerbilli e 7 ceppi di polli. Ogni linea ha le sue caratteristiche nell'insieme di geni, sensibilità a vari antigeni e fattori di stress. Gli animali lineari vengono sistematicamente monitorati per l'omozigosi. Durante l'allevamento L. zh. ricevono 5 cucciolate di topi all'anno, in media 7 topi per figliata, rispettivamente nei ratti 5 e 7, nelle cavie 3 e 5, nei conigli 4 e 6. Premesse per L. zh.(vivari) devono essere altamente igienici, spaziosi, con un ricambio d'aria di 10 volte l'ora e un'umidità dell'aria del 5065%. Su 1 m 2 di area vengono posti 65 topi adulti o 240 topi giovani, 20 x 100 ratti, 30 x 40 criceti, 15 x 18 porcellini d'India, 3 x 4 conigli. In una gabbia non possono essere contenuti più di 15 topi, 10 ratti, 5 criceti e porcellini d'India e 1 coniglio. Almeno il 50% della superficie del vivaio è destinata ai locali di servizio. Per evitare lo scambio di agenti infettivi, non è consentito allevare specie diverse. L. zh. nella stessa stanza o gabbia. Topi, ratti, porcellini d'India e criceti vengono tenuti principalmente in vasche di plastica a forma di cono con coperchio a rete; conigli, cani, scimmie e uccelli in gabbie metalliche. Vassoi e gabbie sono posizionati su scaffalature di 1 x 6 livelli (Fig. 2), dotati di abbeveratoi automatici e alimentatori a bunker, e accuratamente lavati e disinfettati con mezzi fisici o chimici prima dell'uso. I bagni di topi e ratti vengono sostituiti settimanalmente con altri puliti. La rimozione dei rifiuti e il lavaggio vengono effettuati in un apposito locale dotato di appositi dispositivi o lavatrici. Si nutrono L. zh. mangime naturale o concentrati bricchettati in base al fabbisogno giornaliero sviluppato. Il mangime bricchettato viene posto negli alimentatori per diversi giorni. Servi L. zh. personale addestrato e sottoposto a visita medica.

L. zh. Molte malattie infettive sono caratteristiche: salmonellosi, listeriosi, stafilococcosi, vaiolo, diarrea virale, coriomeningite linfocitaria, coccidiosi, elmintiasi, micosi, infezioni trasmesse da zecche, ecc. Trasporto latente (specialmente nei ratti) di batteri e virus patogeni, forme nascoste di malattie infettive si riscontrano malattie ad eziologia poco studiata. Alcune infezioni L. zh. sono zooantroponosi. Prevenzione delle malattie L. zh. si basa sul rigoroso rispetto delle norme igienico-sanitarie, sulla massima disinfezione dell'ambiente (locali, aria, attrezzature, mangimi, lettiere, ecc.). La produzione è organizzata in alcuni paesi L. zh. senza specifici fattori patogeni, i cosiddetti animali SPF (vedi Animali sterili). Crescente necessità di L. zh. ha portato alla nascita della scienza del L. zh., che comprende genetica, ecologia, morfologia, fisiologia, patologia e altre sezioni, nonché l'allevamento speciale di animali da laboratorio. In molti paesi (USA, Gran Bretagna, Germania, Francia, URSS, ecc.) esistono centri scientifici corrispondenti, il cui lavoro è coordinato dal Comitato Internazionale per la Scienza delle Scienze L. zh.(YCLAS).

Letteratura:
Bashenina N.V., Guida all'allevamento e all'allevamento di nuove specie di piccoli roditori nella pratica di laboratorio. M., 1975;
Norme sanitarie per la progettazione, l'attrezzatura e la manutenzione delle cliniche biologiche sperimentali (vivarium), M., 1973.

Nel lavoro diagnostico dei laboratori batteriologici è spesso necessario ricorrere all'infezione dei cosiddetti animali da laboratorio o sperimentali. Molto spesso nella pratica quotidiana vengono utilizzati a questo scopo animali piccoli ed economici: topi e ratti bianchi, porcellini d'India, conigli e uccelli, piccioni e polli. Cani e gatti vengono utilizzati meno frequentemente e vari tipi di animali da fattoria sono ancora meno utilizzati. Lo scopo dei metodi di ricerca biologica è determinare la patogenicità o il grado di virulenza del materiale in studio, isolare colture pure di microbi dal materiale, separare microrganismi patogeni da una miscela con specie saprofite, ecc. Anche gli animali da laboratorio sono ampiamente utilizzati nella pratica sierologica: porcellini d'India - per ottenere il complemento, conigli (pecore, vitelli) - nella produzione di vari sieri agglutinanti, emolisina, eritrociti, ecc. Per la produzione di mezzi nutritivi speciali, sangue, siero, vari organi, tessuti, ecc. . sono ottenuti da animali Inoltre, gli animali da laboratorio sono ampiamente utilizzati per determinare le qualità dei farmaci biologici e chemioterapici, nonché nel lavoro scientifico e sperimentale. Gli animali da laboratorio vengono utilizzati anche per diagnosticare alcune malattie infettive, modellare processi infettivi sperimentali acuti e cronici, stabilire la virulenza e la tossigenicità dei ceppi microbici studiati, determinare l'attività dei vaccini preparati e studiarne la sicurezza.

I laboratori batteriologici per lavori di routine allevano solitamente animali da laboratorio in vivai appositamente organizzati per questo scopo. Ciò consente di ottenere sempre quantità sufficienti di materiale sperimentale testato e di qualità impeccabile. Se gli animali non vengono allevati, ma tenuti solo in laboratorio, la stanza per loro è chiamata vivaio. Nuovi lotti di animali vengono acquistati dai vivai. Le condizioni di alloggio e alimentazione in questi reparti sono pressoché le stesse, pertanto nel materiale sottostante non ci sarà alcuna differenziazione tra le strutture di laboratorio indicate.

Brevi informazioni sul mantenimento, l'allevamento, l'alimentazione e le malattie degli animali da laboratorio

La detenzione degli animali negli asili nido dovrebbe, ove possibile, corrispondere alle condizioni della loro esistenza in natura. Questa disposizione vale soprattutto per gli animali e gli uccelli selvatici nati liberi (colombe selvatiche, passeri, topi grigi domestici e ratti). In condizioni di alloggio e alimentazione sfavorevoli per loro, questi animali muoiono rapidamente in cattività (in particolare passeri e topi grigi). Un prerequisito per il buon funzionamento del vivaio è il rigoroso rispetto di tutte le norme veterinarie, sanitarie, zootecniche e zooigieniche. Questi ultimi prevedono la custodia degli animali in gabbie spaziose, leggere, asciutte e pulite, in locali ben ventilati con temperatura normale, un'alimentazione razionale e nutriente e l'attuazione di misure preventive per prevenire varie malattie. Una buona composizione dei tori (maschi e femmine) è di grande importanza per un allevamento.

Il vivaio (vivarium) deve avere più sezioni per l'allevamento di diverse tipologie di animali (conigli, porcellini d'India, topi, ecc.). La struttura del vivaio comprende:

    dipartimento per la quarantena e l'adattamento degli animali appena arrivati;

    clinica biologica sperimentale per la detenzione di animali da esperimento;

    reparti di isolamento per animali sospettati di malattie infettive e noti per essere malati, la cui distruzione, secondo le condizioni dell'esperimento, non è auspicabile;

    una sala sperimentale (o sala di manipolazione) in cui vengono eseguite la pesatura, la termometria, l'infezione, la vaccinazione degli animali, il prelievo di sangue e alcune altre procedure.

L'attrezzatura della sala sperimentale è determinata caso per caso dai compiti e dalle condizioni della ricerca scientifica condotta.

Il reparto di quarantena, il reparto per animali da esperimento e il reparto di isolamento per animali infetti si trovano in locali rigorosamente isolati tra loro e da tutti gli altri locali del vivaio.

Oltre alle principali unità strutturali sopra elencate, il vivaio dovrebbe contenere:

a) una cucina per mangimi composta da due locali adiacenti per la lavorazione e la produzione di mangimi con uscite indipendenti sul corridoio da ciascuna stanza, una dispensa con cassapanche appositamente attrezzate (in metallo o rivestite di stagno) e frigoriferi per la conservazione delle scorte di mangime,

b) un reparto di disinfezione e lavaggio composto da 2 locali, uniti da un'autoclave di transizione o da una camera a calore secco.

Il lavoro del reparto di disinfezione e lavaggio è determinato dalle condizioni del materiale in ingresso per la lavorazione. Il materiale infetto, come gabbie, lettiere, mangiatoie, viene prima disinfettato e poi pulito e lavato meccanicamente. Il materiale che non presenta rischio di infezione deve essere prima pulito meccanicamente e poi (se necessario) sterilizzato.

La lavanderia di un vivaio adeguatamente organizzato è dotata di uno scivolo per i rifiuti per la rimozione dei rifiuti e di un carrello elevatore per la consegna del materiale e delle attrezzature al vivaio.

Accanto al reparto di disinfezione e lavaggio si trova un magazzino di attrezzature pulite (di ricambio) con gabbie, abbeveratoi, mangiatoie, ecc., locali domestici e un blocco sanitario (docce e servizi igienici) per il personale di servizio.

In conformità con le norme sanitarie vigenti, il vivaio si trova in un edificio separato o all'ultimo piano di un edificio adibito a laboratorio. Quando si posiziona un vivaio nell'edificio del laboratorio, deve essere completamente isolato da tutte le altre stanze.

La stanza in cui vengono tenuti gli animali da laboratorio deve essere calda, luminosa e asciutta, dotata di riscaldamento centralizzato, illuminazione naturale e artificiale, alimentazione forzata e ventilazione di scarico, fornitura di acqua calda e fredda.

I pavimenti del vivaio sono in materiale impermeabile, senza battiscopa, e sono in pendenza verso le aperture o grondaie collegate alla rete fognaria. Le pareti sono rivestite con piastrelle smaltate, i soffitti e le porte sono dipinti con colori ad olio.

GOST 33216-2014

Gruppo T58

STANDARD INTERSTATALE

GUIDA ALLA TENUTA E ALLA CURA DEGLI ANIMALI DA LABORATORIO

Linee guida per la sistemazione e la cura degli animali. Disposizioni specie-specifiche per roditori da laboratorio e conigli


ISS 13.020.01

Data di introduzione 2016-07-01

Prefazione

Gli obiettivi, i principi di base e la procedura di base per lo svolgimento dei lavori sulla standardizzazione interstatale sono stabiliti in GOST 1.0-92 "Sistema di standardizzazione interstatale. Disposizioni di base" e GOST 1.2-2009 "Sistema di standardizzazione interstatale. Standard interstatali, regole, raccomandazioni per la standardizzazione interstatale. Norme per lo sviluppo, l'adozione, le applicazioni, gli aggiornamenti e le cancellazioni"

Informazioni standard

1 SVILUPPATO dalla partnership senza scopo di lucro "Associazione di specialisti nel lavoro con animali da laboratorio" (Rus-LASA)

2 INTRODOTTO dal Comitato Tecnico per la Normazione TC 339 “Sicurezza delle materie prime, dei materiali e delle sostanze”

3 ADOTTATO dal Consiglio interstatale per la standardizzazione, la metrologia e la certificazione (protocollo del 22 dicembre 2014 N 73-P)

Nome abbreviato del paese di
MK (ISO 3166) 004-97

Nome abbreviato dell'organismo nazionale di normalizzazione

Azerbaigian

Azstandard

Bielorussia

Stendardo statale della Repubblica di Bielorussia

Kazakistan

Gosstandart della Repubblica del Kazakistan

Kirghizistan

Standard kirghiso

Moldavia

Standard Moldavia

Russia

Rosstandart

4 Con ordinanza dell'Agenzia federale per la regolamentazione tecnica e la metrologia del 9 novembre 2015 N 1733-st, lo standard interstatale GOST 33216-2014 è stato adottato come standard nazionale della Federazione Russa il 1 luglio 2016.

5 La presente norma è conforme al documento internazionale Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e altri scopi scientifici (ETS N 123)* (ETS N 123).
________________
* L'accesso ai documenti internazionali e stranieri menzionati qui e più avanti nel testo può essere ottenuto seguendo il collegamento al sito web http://shop.cntd.ru. - Nota del produttore del database.


Traduzione dall'inglese (en).

Livello di conformità - non equivalente (NEQ)

6 INTRODOTTO PER LA PRIMA VOLTA


Le informazioni sulle modifiche a questo standard sono pubblicate nell'indice informativo annuale "Norme nazionali" e il testo delle modifiche e degli emendamenti è pubblicato nell'indice informativo mensile "Norme nazionali". In caso di revisione (sostituzione) o cancellazione della presente norma, il corrispondente avviso sarà pubblicato nell'indice informativo mensile "Norme Nazionali". Informazioni, notifiche e testi rilevanti sono pubblicati anche nel sistema informativo pubblico - sul sito web ufficiale dell'Agenzia federale per la regolamentazione tecnica e la metrologia su Internet

introduzione

introduzione

Gli Stati membri del Consiglio d'Europa hanno deciso che il loro obiettivo è la protezione degli animali utilizzati a fini sperimentali e altri scopi scientifici, garantendo che eventuali dolori, sofferenze, angoscia o danni con conseguenze durature sulla salute derivanti dalle procedure siano tenuti sotto controllo. un minimo.

Il risultato è stata la firma e la ratifica da parte della maggioranza degli Stati membri del Consiglio d’Europa (tutti gli Stati dell’UE, nonché Macedonia, Norvegia, Serbia, Regno Unito di Gran Bretagna e Irlanda del Nord, Svizzera) della Convenzione per la Conservazione sugli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali o per altri fini scientifici STE N 123 , Strasburgo, 18 marzo 1986 (di seguito denominata Convenzione).

La Convenzione copre tutte le attività legate all'uso di animali da laboratorio: stabulazione e cura degli animali, conduzione di esperimenti, uccisione senza crudeltà (eutanasia), rilascio di permessi per l'uso di animali nelle procedure, controllo di allevatori, fornitori e utilizzatori, istruzione e formazione del personale , contabilità statistica. La Convenzione prevede due allegati tecnici contenenti orientamenti sulla cura e il mantenimento degli animali da laboratorio (allegato A) e tabelle per la presentazione di informazioni statistiche sul numero di animali utilizzati a fini scientifici (allegato B).

Almeno una volta ogni cinque anni, la Convenzione è soggetta a revisione nel corso di consultazioni multilaterali delle parti, condotte da un gruppo di lavoro, al fine di analizzare la conformità delle sue disposizioni al mutare delle circostanze e ai nuovi dati scientifici. Di conseguenza, si decide di rivedere alcune disposizioni della Convenzione o di estenderne la validità.

Durante le consultazioni, le parti coinvolgono Stati che non sono membri del Consiglio d'Europa e interagiscono anche con organizzazioni non governative che rappresentano gli interessi di numerosi specialisti: ricercatori, veterinari, allevatori di animali da laboratorio, associazioni per i diritti degli animali, specialisti nella settore delle scienze animali, rappresentanti dell'industria farmaceutica e altri che partecipano alle riunioni dei gruppi di lavoro in qualità di osservatori.

Nel 1998, i firmatari della Convenzione hanno deciso di rivedere l'Allegato A. Il Gruppo di Lavoro ha completato la revisione dell'Allegato A nella sua ottava riunione (22-24 settembre 2004) e lo ha sottoposto alla Consultazione Multilaterale delle Parti per l'approvazione. Il 15 giugno 2006, la quarta consultazione multilaterale delle parti della convenzione europea per la conservazione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e ad altri fini scientifici ha adottato l'allegato A rivisto della convenzione. Il presente allegato stabilisce i requisiti per l'alloggiamento e la cura degli animali sulla base delle conoscenze attuali e delle buone pratiche. Spiega e integra le principali disposizioni dell'articolo n. 5 della Convenzione. Lo scopo di questo allegato è quello di assistere le autorità pubbliche, le istituzioni e i singoli individui nei loro sforzi per raggiungere gli obiettivi del Consiglio d’Europa a questo riguardo.

Il capitolo "Parte Generale" è una guida al posizionamento, al mantenimento e alla cura di tutti gli animali utilizzati a fini sperimentali e per altri scopi scientifici. Ulteriori raccomandazioni per i tipi più comunemente utilizzati sono fornite nelle sezioni pertinenti. Se non sono presenti informazioni in tale sezione, devono essere seguite le prescrizioni riportate nella parte generale.

Le sezioni specifiche per specie sono compilate sulla base delle raccomandazioni di gruppi di esperti per lavorare con roditori, conigli, cani, gatti, furetti, primati non umani, animali da fattoria, maialini in miniatura, uccelli, anfibi, rettili e pesci. I gruppi di esperti hanno fornito ulteriori informazioni scientifiche e pratiche, sulla base delle quali sono state formulate raccomandazioni.

L'Allegato A comprende consigli sulla progettazione di strutture per l'alloggiamento degli animali (vivarium), nonché raccomandazioni e linee guida per la conformità ai requisiti della Convenzione. Tuttavia, gli standard dei locali consigliati sono i minimi accettabili. In alcuni casi potrebbe essere necessario aumentarli, poiché i fabbisogni individuali del microambiente possono differire significativamente a seconda del tipo di animale, della loro età, delle condizioni fisiche, della densità di stabulazione, dello scopo di detenzione degli animali, ad esempio per l'allevamento o per la riproduzione. sperimentazione, nonché la durata del loro alloggio.

L'allegato A riveduto è entrato in vigore 12 mesi dopo la sua adozione, il 15 giugno 2007.

Questo standard è stato sviluppato tenendo conto delle norme della Convenzione europea per la protezione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e ad altri fini scientifici (STE n. 123), in particolare l'Allegato A e l'articolo n. 5 della Convenzione.

La serie GOST "Linee guida per la cura e il mantenimento degli animali da laboratorio" è stata sviluppata sulla base e comprende tutte le disposizioni dell'allegato A della Convenzione per la conservazione degli animali vertebrati utilizzati a fini sperimentali e altri scopi scientifici e, quindi, queste gli standard sono armonizzati con i requisiti europei in questo ambito.

1 zona di utilizzo

La norma stabilisce i requisiti generali per l'alloggiamento, il mantenimento e la cura di roditori e conigli da laboratorio utilizzati per scopi didattici, sperimentali e altri scopi scientifici.

2 Riferimenti normativi

Questo standard utilizza un riferimento normativo al seguente standard:

GOST 33215-2014 Linee guida per il mantenimento e la cura degli animali da laboratorio. Regole per l'attrezzatura dei locali e l'organizzazione delle procedure

Nota - Quando si utilizza questo standard, è consigliabile verificare la validità degli standard di riferimento nel sistema di informazione pubblica - sul sito web ufficiale dell'Agenzia federale per la regolamentazione tecnica e la metrologia su Internet o utilizzando l'indice di informazione annuale "Norme nazionali" , che è stato pubblicato a partire dal 1 gennaio dell'anno in corso, e sulle questioni dell'indice informativo mensile "Norme nazionali" per l'anno in corso. Se lo standard di riferimento viene sostituito (modificato), quando si utilizza questo standard dovresti essere guidato dallo standard sostitutivo (modificato). Se la norma di riferimento viene annullata senza sostituzione, la disposizione in cui ad essa è fatto rinvio si applica nella parte che non pregiudica tale rinvio.

3 Termini e definizioni

Questo standard utilizza termini con definizioni corrispondenti, secondo GOST 33215-2014.

4 Requisiti specifici della specie per l'allevamento di roditori

4.1 Introduzione

4.1.1 Topi

Il topo da laboratorio è stato allevato dal topo domestico selvatico (Mus musculus), un animale scavatore e arrampicatore che è prevalentemente notturno e costruisce nidi per regolare le condizioni microambientali, il riparo e la riproduzione. I topi sono ottimi arrampicatori, ma sono riluttanti ad attraversare spazi aperti e preferiscono stare vicino a ripari, muri o altri oggetti. Il tipo di organizzazione sociale delle comunità di topi varia ed è determinata principalmente dalla densità di popolazione. I maschi riproduttivi attivi mostrano un comportamento territoriale pronunciato e le femmine in gravidanza e in allattamento possono diventare aggressive quando difendono i nidi. Poiché i topi, soprattutto quelli albini, hanno una vista scarsa, fanno molto affidamento sul loro olfatto e lasciano tracce di urina nel loro habitat. I topi hanno anche un udito molto acuto e sono sensibili agli ultrasuoni. Esistono differenze significative nel comportamento dei topi di diversi ceppi.

4.1.2 Ratti

Il ratto da laboratorio è stato allevato dal ratto grigio (Rattus norvegicus). I ratti sono animali sociali, evitano gli spazi aperti e usano i segni dell'urina per marcare il territorio. Il loro senso dell'olfatto e dell'udito è molto sviluppato e i ratti sono particolarmente sensibili agli ultrasuoni; La visione diurna è debole, ma in alcune linee pigmentate la visione è piuttosto nitida in condizioni di scarsa illuminazione. I ratti albini evitano livelli di luce superiori a 25 lux (lx). L'attività dei ratti aumenta di notte. Gli animali giovani sono molto curiosi e spesso si impegnano in giochi sociali.

4.1.3 Gerbilli

Il gerbillo della Mongolia o di mezzogiorno (Meriones sp.) è un animale sociale prevalentemente notturno, ma in condizioni di laboratorio rimane attivo alla luce del giorno. In natura, i gerbilli scavano tane con ingressi a tunnel per proteggersi dai predatori e quindi spesso mostrano comportamenti di scavo stereotipati in ambienti di laboratorio se non sono dotati di condizioni di scavo.

4.1.4 Criceti

L'antenato selvatico del criceto da laboratorio è Mesocricetus sp. - un animale che conduce uno stile di vita prevalentemente solitario. Le femmine di criceto sono più grandi e più aggressive dei maschi e possono ferire gravemente il loro partner. I criceti spesso creano una zona toilette separata nella loro gabbia e marcano il territorio con le secrezioni delle ghiandole situate ai lati del corpo. Le femmine di criceto spesso mangiano i loro piccoli per ridurre il numero di figli che hanno.

4.1.5 Porcellini d'India

Le cavie selvatiche (Cavia porcellus) sono roditori socievoli e in movimento attivo che non scavano mai buche, ma si stabiliscono in rifugi o usano le tane di altre persone. I maschi adulti possono essere aggressivi tra loro, ma in generale l'aggressività è rara. I porcellini d'India tendono a congelarsi se sentono un suono inaspettato. Possono farsi prendere dal panico come intero gruppo e scappare in risposta a un movimento improvviso e inaspettato. I porcellini d'India sono particolarmente sensibili allo spostamento da un posto all'altro e possono quindi congelarsi per trenta minuti o più.

4.2 Controllo degli habitat

4.2.1 Ventilazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 4.1.

4.2.2 Temperatura

I roditori devono essere tenuti ad una temperatura compresa tra 20°C e 24°C. Se tenuti in gruppo, la temperatura nelle gabbie con fondo solido è spesso superiore a quella ambiente, e anche con una buona ventilazione può superarla di 6°C. Il materiale per la costruzione di nidi e case consente agli animali di controllare autonomamente il microclima. Particolare attenzione dovrebbe essere prestata al mantenimento della temperatura nei sistemi di barriera e dove vengono tenuti animali senza pelo.

4.2.3 Umidità

L'umidità relativa negli alloggi dei roditori dovrebbe essere mantenuta tra il 45% e il 65%. L'eccezione sono i gerbilli, che dovrebbero essere mantenuti al 35-55% di umidità relativa.

4.2.4 Illuminazione

L'illuminazione della gabbia dovrebbe essere bassa. Le rastrelliere per gabbie dovrebbero avere un ripiano superiore oscurato per ridurre il rischio di degenerazione della retina negli animali, soprattutto albini, tenuti nella parte superiore delle gabbie. Per osservare gli animali al buio durante la loro fase attiva si può utilizzare la luce rossa, invisibile ai roditori.

4.2.5 Rumore

Poiché i roditori sono molto sensibili agli ultrasuoni e li utilizzano per comunicare, è necessario ridurre al minimo i segnali sonori estranei in questo intervallo. Gli ultrasuoni (superiori a 20 kHz) emessi dalle apparecchiature di laboratorio, inclusi rubinetti che gocciolano, ruote di carrelli e monitor di computer, possono causare comportamenti anomali e problemi riproduttivi negli animali. Si consiglia di misurare periodicamente il livello di rumore nelle stalle degli animali su un ampio intervallo di frequenze e per un lungo periodo di tempo.

4.2.6 Requisiti per i sistemi di allarme - secondo GOST 33215-2014, clausola 4.6.

4.3 Condizioni e fattori che influiscono sulla salute degli animali sono indicati in GOST 33215-2014, clausole 6.1 e 6.4.

4.4.1 Posizionamento

Gli animali sociali dovrebbero essere tenuti in gruppi permanenti e armoniosi, anche se in alcuni casi, ad esempio, quando topi maschi adulti, criceti o gerbilli vengono tenuti insieme, l'alloggiamento in gruppo è problematico a causa dell'aggressività intraspecifica.

Se esiste il rischio di aggressione o lesioni, gli animali possono essere tenuti individualmente. Dovrebbe essere evitata la rottura di gruppi stabili e armoniosi poiché ciò può causare stress molto grave negli animali.

4.4.2 Arricchimento dell'habitat

Le gabbie e i materiali utilizzati per l'arricchimento ambientale dovrebbero consentire agli animali di esibire un comportamento normale e ridurre la probabilità di situazioni di conflitto.

I materiali per la lettiera e la nidificazione, nonché il riparo, sono componenti importanti dell'habitat dei roditori utilizzati per la riproduzione, il mantenimento delle colonie o per scopi sperimentali. Devono essere sempre presenti nella gabbia, a meno che ciò non sia contrario a considerazioni veterinarie o comprometta il benessere degli animali. Se è necessario rimuovere tali materiali dalle gabbie, ciò dovrebbe essere fatto consultandosi con il personale addetto alla cura degli animali e con una persona competente con responsabilità di consulenza sul benessere degli animali.

Il materiale da costruzione del nido deve consentire agli animali di creare un nido completo e chiuso. Se ciò non è possibile, agli animali dovrebbero essere fornite case nido. Il materiale della lettiera dovrebbe assorbire l'urina ed essere utilizzato dagli animali per lasciare segni di urina. I materiali per la nidificazione sono essenziali per topi, ratti, criceti e gerbilli poiché consentono loro di creare un microambiente adatto al riposo e alla riproduzione. Le case nido e altri rifugi sono importanti per porcellini d'India, criceti e ratti.

I porcellini d'India dovrebbero sempre ricevere materiali come fieno da masticare e in cui nascondersi.

I bastoncini da masticare in legno possono essere utilizzati come arricchimento dell'habitat per tutti i roditori da laboratorio.

I rappresentanti della maggior parte delle specie di roditori cercano di dividere la gabbia in diverse zone: per il consumo e la conservazione del cibo, il riposo e la minzione. Questa separazione può essere basata su un segno olfattivo piuttosto che su una barriera fisica, ma le barriere parziali possono comunque essere utili perché consentono agli animali di avviare un contatto o di evitare i compagni di gabbia. Per aggiungere complessità al tuo ambiente, è altamente consigliabile utilizzare oggetti aggiuntivi. Tubi, scatole e rastrelliere per arrampicarsi sono esempi di strutture utilizzate con successo per i roditori. Inoltre, consentono di aumentare l'area utilizzabile della cella.

I gerbilli hanno bisogno di più spazio rispetto ad altre specie di roditori. L'area della gabbia dovrebbe consentire loro di costruire e/o utilizzare tane di dimensioni adeguate. I gerbilli richiedono uno spesso strato di lettiera per scavare, nidificare e scavare, che dovrebbe essere lungo fino a 20 cm.

Dovrebbero essere utilizzate gabbie traslucide o leggermente colorate per fornire una visione chiara degli animali senza disturbarli.

Gli stessi principi riguardanti la qualità e la quantità dello spazio, i materiali di arricchimento ambientale e altri requisiti stabiliti nel presente documento dovrebbero applicarsi ai sistemi di barriera, come i sistemi di gabbie ventilate individualmente (IVC), sebbene le loro caratteristiche di progettazione possano richiedere modifiche in attuazione di quanto sopra. i principi.

4.4.3 Recinzione: dimensioni e struttura del pavimento

Le gabbie dovrebbero essere realizzate con materiali facili da pulire e progettate per consentire di effettuare osservazioni senza disturbare gli animali.

Una volta che gli animali giovani diventano attivi, richiedono in proporzione più spazio degli adulti.

4.4.3.1 Dimensioni

In questa e nelle successive tabelle che presentano le linee guida per l'alloggiamento dei roditori, "altezza della gabbia" si riferisce alla distanza tra il pavimento e la parte superiore della gabbia, con più del 50% dell'area minima della gabbia richiesta per trovarsi a questa altezza prima che vengano aggiunti materiali per creare un ambiente ricco di stimoli (arricchimento ambientale).

Quando si pianificano le procedure, è necessario tenere conto della crescita degli animali per fornire loro uno spazio vitale sufficiente (come dettagliato nelle Tabelle 1-5) per l'intero periodo dello studio.

4.4.3.2 Struttura del pavimento

Un pavimento solido con sottostrato o un pavimento perforato è preferibile ai pavimenti a doghe o a rete. In caso di utilizzo di gabbie con pavimento a stecche o a rete, gli animali devono disporre, se ciò non contraddice le condizioni sperimentali, di zone del pavimento solide o coperte da lettiera per il riposo. Per i porcellini d'India, le traverse possono essere un'alternativa. È consentito non utilizzare materiale da lettiera durante l'accoppiamento degli animali.

I pavimenti in rete possono causare lesioni gravi e devono essere attentamente ispezionati per individuare eventuali parti allentate e spigoli vivi e rimossi tempestivamente.

Le femmine alla fine della gravidanza, durante il parto e durante l'allattamento dei piccoli dovrebbero essere tenute esclusivamente in gabbie con fondo solido e materiale da lettiera.

Tabella 1 - Topi: dimensioni minime della gabbia (recinto).

minimo dimensione, cm

Superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

Nella colonia e durante gli esperimenti

Allevamento

Per coppie monogame (outbred o inbred) o triadi (inbred). Per ogni aggiuntivo alle femmine con cucciolata vanno aggiunti 180 cm

Nella colonia di allevatori*

Superficie della gabbia 950 cm

Superficie della gabbia 1500 cm

* Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i topi possono essere alloggiati in gruppi a densità più elevata, a condizione che siano alloggiati in gabbie grandi con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di compromissione del loro benessere, come maggiore aggressività, maggiore morbilità e mortalità. e stereotipie e altri disturbi del comportamento normale, perdita di peso o altre reazioni fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.


Tabella 2 - Ratti: dimensioni minime delle gabbie (recinzioni).

minimo dimensione, cm

Superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

Nella colonia e durante gli esperimenti*

Allevamento

Femmina con cucciolata; per ogni aggiuntivo il ratto adulto dovrebbe essere aggiunto 400 cm

Nella colonia di allevatori**

Gabbia - 1500 cm

Nella colonia di allevatori**

Gabbia - 2500 cm

* Negli studi a lungo termine, gli animali dovrebbero essere dotati di gabbie di dimensioni adeguate per consentire loro di essere alloggiati in gruppi sociali. Poiché in tali studi è difficile prevedere la densità della colonia al termine dell'esperimento, è accettabile alloggiare gli animali in condizioni con un'area per animale inferiore a quella sopra indicata. In questo caso, la priorità dovrebbe essere data alla coerenza del gruppo.

** Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i cuccioli possono essere alloggiati in gruppi a densità più elevata, a condizione che siano alloggiati in gabbie grandi con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di compromissione del loro benessere, come maggiore aggressività, maggiore morbilità e mortalità e comparsa di stereotipie e altri disturbi del comportamento normale, perdita di peso o altre reazioni fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.


Tabella 3 - Gerbilli: dimensioni minime delle gabbie (recinzioni)

minimo dimensione, cm

Superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

Nella colonia (in stock) e durante gli esperimenti

Allevamento

Per coppie monogame o triadi con cucciolata


Tabella 4 - Criceti: ​​dimensioni minime delle gabbie (recinzioni)

minimo dimensione, cm

Superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

Nella colonia e durante gli esperimenti

Allevamento

Femmine o coppie monogame con cucciolate

Nella colonia di allevatori*

* Per un breve periodo dopo lo svezzamento, i criceti possono essere alloggiati in gruppi a densità più elevate, a condizione che siano alloggiati in gabbie grandi con un ambiente sufficientemente arricchito, purché non vi siano segni di compromissione del loro benessere, come maggiore aggressività, maggiore morbilità e mortalità, stereotipie e altri disturbi del comportamento normale, perdita di peso o altre reazioni fisiologiche o comportamentali causate dallo stress.


Tabella 5 - Cavie: dimensioni minime delle gabbie (recinzioni).

minimo dimensione, cm

Superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

Nella colonia e durante gli esperimenti

Allevamento

Coppie con lettiera; per ogni aggiuntivo alle femmine vanno aggiunti 1000 cm

4.4.4 Alimentazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.6.

4.4.5 Irrigazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.7.

4.4.6 Biancheria da letto, materiale di nidificazione e assorbente - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.8.

4.4.7 Pulizia delle gabbie

Sebbene sia necessario mantenere elevati standard di igiene, potrebbe essere consigliabile lasciare qualche traccia di odore sugli animali. Si dovrebbe evitare di pulire le gabbie troppo frequentemente, soprattutto quando si tengono femmine incinte o femmine con prole, poiché il disturbo può indurre la femmina a mangiare la prole o interrompere il suo comportamento materno.

La frequenza della pulizia della gabbia dovrebbe essere decisa in base al tipo di gabbia utilizzata, alla specie di animale, alla densità delle colonie e alla capacità dei sistemi di ventilazione di mantenere un'adeguata qualità dell'aria interna.

4.4.8 Manipolazione degli animali

Dovresti cercare di causare il minimo disturbo agli animali e di non disturbare le condizioni della loro detenzione, il che è particolarmente importante per i criceti.

4.4.9 Eutanasia - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.11.

4.4.10 Conservazione dei registri - in conformità con GOST 33215-2014, clausola 6.12.

4.4.11 Identificazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 6.13.

5 Requisiti specifici della specie per l'allevamento dei conigli

5.1 Introduzione

In condizioni naturali, i conigli (Oryctolagus cuniculi) vivono in colonie. Quando tenuti in cattività, devono essere dotati di spazio sufficiente con un ambiente arricchito, la cui mancanza può portare alla perdita della normale attività motoria e all'insorgenza di anomalie scheletriche.

5.2 Controllo degli habitat

5.2.1 Ventilazione - secondo GOST 33215-2014, clausola 4.1.

5.2.2 Temperatura

I conigli devono essere tenuti ad una temperatura compresa tra 15°C e 21°C. La temperatura nei recinti con fondo solido, dove viene tenuto un gruppo di conigli, è molto spesso superiore alla temperatura ambiente e, anche con un sistema di ventilazione ben funzionante, può superarla di 6°C.

I materiali per la costruzione di nidi e/o case danno agli animali la possibilità di controllare autonomamente il microclima. Particolare attenzione dovrebbe essere prestata alle letture della temperatura nei sistemi di barriera.

5.2.3 Umidità

L'umidità relativa dell'aria nei locali di allevamento dei conigli non deve essere inferiore al 45%.

5.4.1 Posizionamento

I conigli giovani e le femmine dovrebbero essere tenuti in gruppi armoniosi. L’isolamento è accettabile se le ragioni sono il benessere degli animali o considerazioni veterinarie. La decisione di ospitare da soli gli animali per scopi sperimentali dovrebbe essere presa in consultazione con il personale addetto alla cura degli animali e con una persona responsabile con poteri consultivi riguardo alle condizioni fisiche e mentali degli animali. I maschi adulti non sterilizzati possono essere territorialmente aggressivi e non dovrebbero essere tenuti con altri maschi non sterilizzati. Per l'allevamento in gruppo di conigli femmine giovani e adulte, i recinti a pavimento con un habitat ricco si sono rivelati eccellenti. Tuttavia, il gruppo dovrebbe essere attentamente monitorato per prevenire possibili aggressioni. I fratellini che vivono insieme dal momento in cui vengono svezzati dalla madre sono ideali per l'alloggio in gruppo. Nei casi in cui non è possibile tenere gli animali in gruppo, gli animali dovrebbero essere tenuti il ​​più vicino possibile gli uni agli altri, in vista.

5.4.2 Arricchimento dell'habitat

I materiali adatti per l'arricchimento dell'habitat dei conigli includono foraggi grossolani, blocchi di fieno o bastoncini da masticare e strutture per fornire riparo.

Nei recinti per stabulazione collettiva è opportuno prevedere il posizionamento di barriere di separazione e strutture di ricovero che consentano l'osservazione degli animali da lì. Durante la riproduzione, i conigli dovrebbero essere forniti di materiale per la nidificazione e di cassette per il parto.

5.4.3 Recinzione: dimensioni e struttura del pavimento

La preferenza dovrebbe essere data alle gabbie rettangolari, che dovrebbero avere una superficie rialzata non superiore al 40% della superficie totale del pavimento. Lo scaffale dovrebbe consentire agli animali di sedersi e sdraiarsi, nonché di muoversi liberamente sotto di esso. Anche se l’altezza della gabbia dovrebbe consentire al coniglio di sedersi senza che la punta delle orecchie sollevate tocchi il soffitto, lo stesso requisito non si applica ad una piattaforma rialzata. Se ci sono sufficienti ragioni scientifiche o veterinarie per non posizionare un ripiano di questo tipo nella gabbia, l'area della gabbia dovrebbe essere più grande del 33% per un coniglio e del 60% più grande per due conigli. Ove possibile, i conigli dovrebbero essere tenuti in recinti.

5.4.3.1 Dimensioni

Tabella 6 - Conigli di età superiore a 10 settimane: dimensioni minime del recinto

minimo superficie per 1-2 animali socialmente adatti tra loro, cm

minimo Altezza (cm

I dati nella tabella 6 si applicano sia alle gabbie che agli involucri. Le gabbie devono avere una piattaforma rialzata (vedi Tabella 9). I recinti dovrebbero essere dotati di barriere di separazione che consentano agli animali di avviare o evitare il contatto sociale. Per ogni coniglio dal 3° al 6° posto nel recinto, è necessario aggiungere 3000 cm all'area del recinto e per ogni successivo - 2500 cm.

Tabella 7 - Coniglio femmina con cuccioli: dimensioni minime del recinto

Peso femmina, kg

minimo dimensione, cm

Spazio aggiuntivo per nidi, cm

minimo Altezza (cm

Almeno 3-4 giorni prima del parto, alla femmina dovrebbe essere assegnato uno scompartimento separato o una cassetta di maternità in cui possa costruire un nido. È meglio che il box maternità sia collocato fuori dal luogo in cui la femmina viene costantemente tenuta. Dovresti anche fornire paglia o altro materiale per creare un nido. Il recinto per i conigli riproduttori deve essere organizzato in modo tale che la femmina possa allontanarsi dai suoi conigli adulti in grado di lasciare il nido in un compartimento separato, rifugio o zona elevata. Dopo lo svezzamento, i conigli della stessa cucciolata dovrebbero essere tenuti insieme il più a lungo possibile nello stesso recinto in cui sono nati.

Fino a otto compagni di cucciolata possono essere tenuti nel recinto di riproduzione fino all'età di sette settimane. Cinque compagni di cucciolata di 8-10 settimane possono essere tenuti nell'area minima consentita del recinto.


Tabella 8 - Conigli di età inferiore a 10 settimane: dimensioni minime del recinto

Età, settimane

minimo dimensione gabbia cm

minimo superficie/animale, cm

minimo Altezza (cm

I dati nella tabella 8 si applicano sia alle gabbie che agli involucri. I recinti dovrebbero essere dotati di barriere di separazione che consentano agli animali di avviare o evitare il contatto sociale. Dopo lo svezzamento, i compagni di cucciolata dovrebbero essere tenuti insieme il più a lungo possibile nello stesso recinto in cui sono nati.


Tabella 9 - Conigli di età superiore a 10 settimane: dimensioni ottimali di una piattaforma rialzata in recinti aventi le dimensioni indicate in Tabella 6.

Età, settimane

Dimensione ottimale del sito, sms

Altezza ottimale della pedana dal pavimento della gabbia, cm

Per garantire il corretto utilizzo della pedana rialzata e della recinzione in generale, nella Tabella 9 sono riportate le dimensioni e l'altezza ottimali alla quale è posizionata la pedana. È consentita una deviazione fino al 10% nella direzione di diminuire o aumentare le dimensioni specificate. Se esistono sufficienti ragioni scientifiche o veterinarie per non collocare un ripiano di questo tipo nel recinto, l'area del recinto dovrebbe essere più grande del 33% per un coniglio e del 60% per due conigli in modo da fornire loro lo spazio per il normale attività fisica e capacità di evitare il contatto con un individuo dominante.

Per i conigli di età non superiore a 10 settimane, le dimensioni ottimali di una piattaforma rialzata sono 55 cm25 cm e la sua altezza dal pavimento dovrebbe consentire agli animali di utilizzare sia la piattaforma che lo spazio sottostante.

5.4.3.2 Fondo della cella

Le recinzioni con pavimenti a doghe non dovrebbero essere utilizzate senza fornire un'area sufficiente affinché tutti gli animali possano riposare contemporaneamente. I pavimenti solidi con sottostrato o i pavimenti perforati sono migliori dei pavimenti a doghe o a rete.
ISS 13.020.01

Parole chiave: animali da laboratorio, roditori, conigli



Testo del documento elettronico
preparato da Kodeks JSC e verificato rispetto a:
pubblicazione ufficiale
M.: Standardinform, 2016



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