Diagnostik bronkoalveoler lavaj. Bronkoalveoler lavaj Bronkoalveoler lavaj tekniği

Akciğerin bir alt segmentini izotonik bir solüsyonla doldurup ardından aspirasyon yoluyla en küçük bronşların ve alveollerin yüzeyinden hücresel elementlerin, proteinlerin ve diğer maddelerin ekstraksiyonunu sağlayan bir araştırma yöntemi. Tanısal subsegmental bronkoalveoler lavaj genellikle bronkofibroskopi subsegmental bronş ağzına getirildikten sonra lokal anestezi altında bronkofibroskopi sırasında yapılır. Bronkofiberskop kanalı yoluyla alt segment bronşuna 50-60 ml izotonik solüsyon damlatılır. Bronko-alveoler lavaj olan bronş lümeninden gelen sıvı, bronkofiberskop kanalından plastik bir kap içerisine aspire edilir. Damlatma ve aspirasyon 2-3 kez tekrarlanır. Gazlı bezden süzülerek mukustan arındırılan aspire edilen sıvıda, alveolar makrofajların hücresel ve protein bileşimi ve fonksiyonel aktivitesi incelenir. Hücresel bileşimi incelemek için bronkoalveoler lavaj santrifüjlenir. Sedimentten smearlar hazırlanır ve hematoksilen-eozin veya Romanovsky ile boyanır. Tanısal bronkoalveoler lavaj, akciğerdeki yayılmış süreçlerin aktivitesini belirlemek için daha sık kullanılır. İdiyopatik fibrozan alveolitin yüksek aktivitesinin bir işareti, bronkoalveolar lavajdaki nötrofil sayısında ve sarkoidoz ve eksojen alerjik alveolitte lenfosit sayısında bir artıştır.

BRONŞALVEOLAR MEDİKAL LAVAJ

Büyük miktarda izotonik çözeltinin endobronşiyal uygulanmasına ve mukus, protein ve küçük bronşların ve alveollerin diğer içeriklerinin pıhtılarının yıkanmasına dayanan akciğer hastalıklarını tedavi etme yöntemi. Terapötik bronkoalveolar lavaj, bir bronkoskop veya çift lümenli endotrakeal tüp yoluyla yapılabilir. İşlem genellikle anestezi altında yapılır. Akciğerlerin yapay havalandırması enjeksiyon yöntemi kullanılarak gerçekleştirilir. Kontrollü bir kateter yoluyla her lober veya segmental bronşa sırayla izotonik bir çözelti damlatılır ve yıkanmış viskoz sekresyon ve mukus pıhtılarıyla birlikte hemen aspire edilir. Bronkoskopik teknik daha çok status astmatikustaki bronşiyal astımı olan hastalarda kullanılır. Bronşları yıkamak için 500-1500 ml izotonik solüsyon kullanılır. Genellikle enjekte edilen sıvı hacminin yaklaşık 1/3 - 1/2'sini aspire etmek mümkündür. Bronşiyal astımı olan hastalarda terapötik bronkoalveolar lavaj endikasyonları nadiren ortaya çıkar, çünkü diğer terapötik önlemlerin kompleksi genellikle status astmatikusun hafifletilmesine yardımcı olur.

Çift lümenli endotrakeal tüp yoluyla terapötik bronkoalveolar lavaj, tek akciğer yapay ventilasyonuyla gerçekleştirilir. Endotrakeal tüpün lümenine ana bronşa bir izotonik çözeltinin damlatılması ve aspirasyonunun gerçekleştirildiği bir kateter yerleştirilir. Akciğere tek seferde 1000-1500 ml solüsyon enjekte edilir ve enjekte edilen sıvı hacminin %90-95'i geri aspire edilir. Prosedür birkaç kez tekrarlanır. Enjekte edilen sıvının toplam hacmi 3-5 ila 40 litre arasında değişir. Çift lümenli endotrakeal tüp yoluyla total bronkoalveoler lavaj, idiyopatik alveolar proteinozis için en etkili tedavidir.

RehberGöğüs Hastalıkları / Ed. N. V. Putova, G. B. Fedoseeva, A. G. Khomenko - L.: Tıp.

Akciğer hasarı

Bronkoalveoler lavaj (Fransız lavajı, Latince lavo'dan yıkamaya, durulamaya kadar), sitolojik, mikrobiyolojik, biyokimyasal ve immünolojik çalışmalar için en küçük bronşların (bronşçuklar) yüzeyinden ve akciğerlerin alveoler yapılarından bir yıkama elde etmenin bronkoskopik bir yöntemidir. Teşhis prosedürü olan L.b., bronş lavajından - çeşitli hastalıklar için büyük ve küçük bronşların terapötik lavajından (örneğin, pürülan bronşit, alveoler proteinozis, bronşiyal astım) ayırt edilmelidir. Sitolojik ve immünolojik yöntemler kullanılarak bronkoalveoler lavajın incelenmesi, hücre canlılığında, fonksiyonel aktivitesinde ve bireysel hücresel elementler arasındaki ilişkilerde belirli değişiklikler yapılmasını mümkün kılar, bu da akciğerlerdeki patolojik sürecin etiyolojisini ve aktivitesini değerlendirmeyi mümkün kılar. Spesifik hücrelerin ve cisimlerin oluşumuyla karakterize edilen hastalıklarda (örneğin, kötü huylu akciğer tümörleri, asbestoz, hemosideroz, histiyositoz X), bronkoalveoler lavajların sitolojik çalışmasının bilgi içeriği, biyopsinin bilgi içeriğine eşit olabilir.

Bronkoalveoler lavajların mikrobiyolojik incelemesi tüberküloz ve pnömositoz patojenlerini ortaya çıkarabilir; biyokimyasal ile - hastalığın doğasına ve aktivitesine bağlı olarak proteinlerin, lipitlerin içeriğindeki değişiklikler, fraksiyon oranlarındaki orantısızlıklar, enzimlerin ve inhibitörlerinin aktivitesindeki bozukluklar. Bronkoalveolar lavajların incelenmesi için listelenen yöntemlerin kapsamlı uygulaması özellikle bilgilendiricidir. L.b'nin en yüksek değeri. akciğerlerdeki yaygın süreçlerin teşhisi için; sarkoidoz (radyolojik değişikliklerin ve akciğerlerin bulunmadığı mediastinal sarkoidoz formunda, bronkoalveoler lavajın incelenmesi birçok durumda akciğer dokusuna verilen hasarın tespit edilmesini sağlar); yayılmış tüberküloz; metastatik tümör süreçleri; asbestoz; pnömositoz, ekzojen alerjik ve idiyopatik fibrozan alveolit; nadir hastalıklar (histiyositoz X, idiyopatik hemosideroz, alveoler mikrolitiazis, alveoler proteinoz). 1 pound = 0.45 kg. akciğerlerdeki sınırlı patolojik süreçlerde (örneğin kötü huylu tümörler, tüberküloz) ve ayrıca kronik bronşit ve bronşiyal astımda tanıyı netleştirmek için başarıyla kullanılabilir. L.b.'den beri. Bronkoskopi sırasında yapıldığında kontrendikasyonlar dikkate alınmalıdır. Çalışmanın riski tanıyı netleştirme gerekliliğini aşmamalıdır. Aslında L.b. Bronş ağacında hem klinik hem de endoskopik olarak belirlenen önemli miktarda pürülan içeriğin olması durumunda kontrendikedir.

Bronkoalveoler lavaj, trakea ve bronşların görsel muayenesinden sonra hem genel anestezi altında sert bir bronkoskop kullanılarak hem de lokal anestezi altında fiberoptik bronkoskopi kullanılarak gerçekleştirilir. Yıkama sıvısı seçilen segmental bronşa enjekte edilir, ardından vakum aspirasyonu yapılır. Bölüm III'e (hasta yatarken) ve bölümler IV, V ve IX'a (hasta otururken) sıvı verilmesi teknik olarak daha uygundur. L.b.'yi gerçekleştirirken. Sert bir bronkoskop kullanarak, tüpün içinden metal bir kılavuz (seçilen segmental bronşa bağlı olarak 20° veya 45° açıyla) sokulur ve içinden 7 veya 8 numaralı radyoopak kateter ilerletilerek ilerletilir 3 -4 cm bronşlara 5- 6. sıra veya sıkıştırıyormuş gibi. Kateterin konumu bir X-ışını televizyon ekranından izlenebilir. Kateter aracılığıyla, 20 ml'lik kısımlar halinde bir şırınga kullanılarak akciğerin seçilen bölümüne 7.2-7.4 pH'a ve 38-40° sıcaklığa sahip steril bir izotonik sodyum klorür çözeltisi dökülür. Lavaj sıvısının hacmi, amaçlanan çalışmaları gerçekleştirmek için gereken bronkoalveoler lavaj miktarına bağlıdır. 20 ml'den az yıkama solüsyonu kullanılması önerilmez çünkü bu durumda bronkoalveolar yapılardan yeterli miktarda sıvı akması sağlanamaz. Kural olarak toplam çözelti miktarı 100-200 ml'dir.

Solüsyonun her porsiyonunun verilmesinden sonra, yıkamanın vakumla aspirasyonu, bir elektrikli emme kullanılarak steril dereceli bir kaba gerçekleştirilir. Fiberoptik bronkoskopi sırasında yıkama sıvısı, seçilen segmental bronşun ağzına yerleştirilen fiberoptik bronkoskop aracılığıyla 50 ml'lik dozlarda uygulanır; aspirasyon fibrobronkoskopun biyopsi kanalından gerçekleştirilir. Bronkoalveolar lavaj atravmatiktir, iyi tolere edilir ve uygulanması sırasında yaşamı tehdit eden herhangi bir komplikasyon görülmedi. L.b.'den sonra hastaların yaklaşık% 19'u. Gün boyunca düşük dereceli ateş gözlenir. Nadir durumlarda aspirasyon pnömonisi gelişir. Ortaya çıkan bronkoalveoler lavajın araştırma için hızlı bir şekilde uygun laboratuvarlara nakledilmesi gerekir. Bu mümkün değilse, yıkamayı -6° ila +6° arasındaki bir sıcaklıkta buzdolabında birkaç saat saklamak mümkündür; hücresel olmayan bileşenlerin incelenmesine yönelik swablar uzun süre dondurulabilir. Sitolojik inceleme yapmak için, alındıktan hemen sonra 10 ml bronkoalveoler lavaj, 4 kat steril gazlı bez veya ince bir ağ içinden bir santrifüj tüpüne süzülür. Daha sonra 10 damla süzülmüş yıkama suyu bir saat camı üzerinde 1 damla Samson sıvısı ile karıştırılarak sayma haznesi doldurulur. Hazne boyunca hücresel elementlerin sayılmasıyla 1 ml yıkamadaki sayıları belirlenir.

Bronkoalveolar lavajın hücresel bileşimi (endopulmoner sitogram), bir daldırma merceği kullanılarak en az 500 hücrenin sayılmasına dayanarak, santrifüjleme yoluyla elde edilen lavaj sıvısı çökeltisinin mikroskobik incelenmesiyle belirlenir. Bu durumda alveoler makrofajlar, lenfositler, nötrofiller, eozinofiller ve bazofiller dikkate alınır. Bronş epitel hücreleri yıkamalarda sayıları çok az olduğundan sayılmaz. Sigara içmeyen sağlıklı kişilerden alınan bronkoalveolar lavaj sıvısı ortalama %85-98 oranında alveolar makrofaj, %7-12 oranında lenfosit, %1-2 oranında nötrofil ve %1'den az eozinofil ve bazofil içerir; toplam hücre sayısı 1 ml'de 0,2 * 10 6 ile 15,6 * 10 6 arasında değişmektedir. Sigara içenlerde toplam hücre sayısı ve lökosit yüzdesi önemli ölçüde artar, alveoler makrofajlar aktif (fagositik) durumdadır. Endopulmoner sitogramdaki değişiklikler, akciğer hastalığının etiyolojisine ve aktivitesine bağlı olarak belirli bir yöne sahiptir. Primer solunum yolu tüberkülozunda (bronkoadenit, miliyer pulmoner tüberküloz) ve sekonder akciğer tüberkülozunun akut formlarında alveoler makrofaj sayısında eşzamanlı bir azalma ile lenfosit sayısında orta derecede bir artışın (% 20'ye kadar) mümkün olduğu tespit edilmiştir. İnfiltratif tüberküloz). Kronik akciğer tüberkülozu olan hastalarda, bronkoalveolar lavajda azalmış veya normal lenfosit içeriği ile nötrofil sayısında (% 20-40'a kadar) bir artış gözlenir.

Pulmoner sarkoidozda, alveoler makrofaj içeriğinde azalma ile birlikte bronkoalveoler lavajda lenfosit seviyesinde önemli bir artış (hastalığın aktif fazında% 60-80'e kadar) gözlenir. Hastalığın kronik seyri ve nüksetmesi ile nötrofil sayısı da artar. Glukokortikosteroid tedavisinin arka planına karşı sürecin ters gelişmesi durumunda, alveolar makrofajların sayısı geri yüklenirken lenfositlerin içeriği azalır. Nötrofil sayısındaki artış prognostik olarak olumsuzdur ve pnömofibroz gelişimini gösterir. Ekzojen alerjik alveolitli hastalarda bronkoalveolar lavajın sitolojik bir çalışması, lenfosit sayısında %60 veya daha fazla bir artış olduğunu ortaya koymaktadır. En belirgin lenfositoz, hastalığın akut evresinde ve alerjenle yapılan inhalasyon provokasyon testinden sonra görülür. İdiyopatik fibrozan alveolit, bronkoalveolar lavajdaki nötrofil içeriğindeki artış (% 39-44'e kadar) ile karakterize edilir. Bronşiyal astımda, bronkoalveoler lavajdaki eozinofillerin sayısı% 30-80'e ulaşır; bu, bronşiyal mukozanın alerjik iltihabı için objektif bir tanı kriteridir. Kronik bronşitli hastalarda bronkoalveoler lavajdaki nötrofil sayısı artar, alveoler makrofaj içeriği azalır, lenfosit ve eozinofil düzeyi normal sınırlar içinde kalır. Kronik obstrüktif ve obstrüktif olmayan bronşitin alevlenmesi aşamasında, bronkoalveoler lavajdaki nötrofil içeriği ortalama% 42'ye yükselir ve remisyonun başlaması aşamasında nötrofil sayısı azalır. Pürülan bronşitin alevlenmesi olan hastalarda nötrofil sayısı keskin bir şekilde artar (% 76'ya kadar). alveolar makrofajların seviyesi azalır (%16,8'e kadar). Kötü huylu akciğer tümörleri için. Sitolojik inceleme sırasında bronkoalveolar yıkamalarda hemosideroz, histiyositoz X. asbest, ksantomatoz şu hastalıklara özgü olarak tespit edilebilir: tümör hücresi kompleksleri, hemosiderofajlar, histiyositler, asbest cisimcikleri, ksantoma hücreleri. Akciğer tüberkülozu olan hastalarda bronkoalveoler yıkamaların bakteriyolojik incelenmesi, vakaların% 18-20'sinde Mycobacterium tuberculosis'in büyümesinin elde edilmesini sağlar.

Mikroskobik olarak, immün yetmezliği olan hastalarda pnömoninin etken maddesi olan Pneumocystis carinii, Papanicolaou boyaması ve gümüş emdirme kullanılarak bronkoalveoler yıkamalarda tanımlanabilir. Akciğer tüberkülozu, akciğer sarkoidozu, eksojen alerjik alveolit, kronik bronşitli hastalarda bronkoalveoler lavajların biyokimyasal bir çalışmasında, proteazların (elastaz, kollajenaz) ortalama aktivitesi normu aşmaktadır. Proteoliz inhibitörlerinin (a1-antitripsin) aktivitesi keskin bir şekilde azalır veya yoktur. Yüksek elastaz aktivitesi, akciğerlerde distrofik süreçlerin (amfizem ve pnömoskleroz) gelişmesine eşlik eder. Elastazın incelenmesi, bu süreçlerin gelişiminin ilk aşamalarını belirlememize ve tedaviyi derhal gerçekleştirmemize olanak tanır. Akciğer tüberkülozu ve kronik bronşitli hastalarda, bronkoalveoler lavajlarda alveolar astarın yüzey aktif tabakasının temelini oluşturan fosfolipitlerin içeriğinde bir azalma bulunur. Akciğer tüberkülozunun küçük formlarında bu, belirli bir sürecin aktivitesi için ek bir test görevi görebilir. T ve B lenfositleri, bağışıklık kompleksleri dahil olmak üzere bronkoalveolar lavajların diğer bileşenlerinin incelenmesi esas olarak bilimsel amaçlarla gerçekleştirilmektedir.

Kaynakça: Avtsyn A.P. ve diğerleri Endopulmoner sitogram, Sov. Med., No. 7, s. 8, 1982, bibliogr., Gerasin V.A. ve diğerleri. Tanısal bronkoalveolar lavaj. Ter. arkh., No. 5, s. 102, 1981, kaynakça; Diagnostik bronkoalveolar lavaj, ed. A G. Khomenko. M., 1988, bibliyografya.

Günümüzde fiberoptik bronkoskopi, üst ve alt hava yollarının doğrudan incelenmesine olanak tanıyan yaygın bir standart tanı yöntemidir. Endoskop nazofarenks ve trakea boyunca hareket ettikçe, büyük bronşlar mukus miktarının yanı sıra mukoza zarının şişmesi ve bronkospazmın derecesini kolayca belirleyebilir. Bronkoskopinin en büyük avantajlarından biri, hava yollarının lümenini incelemenin yanı sıra, büyük ve küçük hava yollarından ve alveollerden örnek alabilme yeteneğidir. Ortaya çıkan numuneler daha sonra hücresel ve hücresel olmayan bileşenleri açısından analiz edilir.
Son yıllarda, şüpheli yaygın inflamatuar hastalık vakalarında, endoskop veya özel tüp kullanılarak yapılan bronkoalveolar lavaj (BAL), trakeal aspirasyon gibi numune almanın daha geleneksel yöntemlerinden biraz daha popüler hale geldi. Uzun yıllar boyunca, alt trakeadan numune almanın alveollerin ve küçük hava yollarının durumu hakkında temsili bilgi sağladığına inanılıyordu, çünkü periferik akciğerdeki serbest hava yolu hücreleri eninde sonunda uzaklaştırılmak üzere trakeaya doğru akıyordu.
Bununla birlikte, alt solunum yolu patolojisi ile ilişkili düşük performansa sahip genç performans atlarıyla ilgili geniş bir vaka çalışması, trakeal aspirasyonla elde edilen örnekler ile BAL ile elde edilenler arasında sitolojik ve bakteriyolojik bulguların zayıf korelasyon gösterdiğini buldu. Çalışmalar, aynı attan alınan trakeal aspiratlardan ve BAL'den alınan sitolojik preparatlardaki farklı hücre sayılarının önemli ölçüde değiştiğini göstermiştir. Bu, trakeal sıvı koleksiyonlarından alınan numunelerin, küçük hava yolları ve alveollerde bulunan hücre ve salgı popülasyonunu doğru şekilde yansıtmayabileceğini göstermektedir. Bu önemlidir çünkü egzersiz intoleransı, inflamatuar hava yolu hasarı ve aşırı duyarlılık küçük hava yolu hastalığı ile ilişkilidir ve en iyi tanı yöntemi BAL sitolojisidir. Ayrıca trakeal aspiratların bakteri kültürü aynı olguda yapılan BAL kültürüne göre daha olumlu sonuçlar vermiştir. Bu nedenle, trakeanın alt kısmının küçük hava yollarında ve alveollerde bulunmayabilen normal bakteri florasını içerdiği görülmektedir. Bu nedenlerden dolayı BAL, trakeal aspirasyonla numune almayla karşılaştırıldığında distal (küçük) hava yollarındaki inflamasyonun değerlendirilmesinde giderek daha popüler bir araç haline geldi.
Solunum sisteminin değerlendirilmesinde ek bir tanı aracı olarak BAL sıvısındaki diferansiyel hücre bolluğunun değerini doğrulamak için rutin klinik muayeneye ek olarak başka niceliksel ölçümlere ihtiyaç vardır. Amfizem sendromu son yirmi yılda ayrıntılı olarak incelenmiştir ve dünya çapındaki birçok araştırma laboratuvarı, amfizemli atlarda BAL hücre farklılaşması ile akciğer fonksiyonu ve histamin bronkokolla mücadele testi arasında yüksek bir korelasyon olduğunu açıkça ortaya koymuştur. Son yıllarda, bulaşıcı olmayan inflamatuar hava yolu hastalığı (IAD) olan genç performans atlarında benzer şekilde karakterize edilen akciğer fonksiyonu, bronkoalveoler lavajın tanısal faydasına ilişkin bu bulgularla tutarlı olmuştur.
Bu bölümün amacı, genç performans atlarında IAD ve yetişkin hayvanlarda amfizem sendromu gibi yaygın pulmoner patolojiden muzdarip olan atların akciğerlerindeki inflamasyonu tanımlamak ve karakterize etmek için bir araç olarak bronkoalveolar lavaj tekniğinin kullanımını tartışmaktır. Ayrıca viral ve bakteriyel akciğer hastalıklarının bronkoalveolar lavaj kullanılarak tanısı konulabilmesi açısından kısaca gözden geçirilmiştir.

BRONKOALVEOLAR LAVAJ İÇİN ENDİKASYONLAR

Atlarda alt solunum yolu iltihabı çeşitli sebeplerden dolayı gelişebilmektedir. Her yaştaki atlar bulaşıcı (bakteriyel/viral) ve bulaşıcı olmayan IAD'den muzdarip olabilir ve çeşitli klinik, fizyolojik ve patolojik belirtiler sergileyebilir. Antrenmandaki 2 ila 3 yaşındaki Safkan atlar üzerinde yapılan geniş çaplı prospektif bir çalışmada, öksürük ve burun akıntısı, antrenman günlerinin kaçırılmasının en yaygın nedeni olarak topallıktan sonra ikinci sırada yer aldı. Bulaşıcı olmayan IAD, hem genç hem de yetişkin performans atlarında meydana gelen en yaygın solunum patolojisidir.
IAD'nin baskın özelliği, sekresyonların birikmesi, hava yolu duvarlarının kalınlaşması, hava yollarının dönüşümü ve son olarak ilerlemiş vakalarda küçük hava yollarının lümen çapını koruma yeteneğinin kaybından kaynaklanan hava yolu tıkanıklığıdır. Hava yolu aşırı duyarlılığı, inflamatuar sürecin bir sonucudur ve bronkospazm ve diğer fonksiyonel anormallikler nedeniyle daha fazla tıkanmaya yol açar. Sağlıklı atlarda, 16 mg/ml konsantrasyonundaki histamin aerosolünün solunmasına yanıt olarak bronkospazm meydana gelir. Bunun aksine, amfizemli yaşlı atlarda, 8 mg/ml'nin altındaki histamin konsantrasyonlarının solunması nedeniyle bronkokonstriksiyon meydana gelir. IAD'li 2 ila 5 yaş arası performans atlarında, 2-3 mg/ml kadar düşük konsantrasyonlarda solunan histamine yanıt olarak bronkokonstriksiyon meydana gelir, bu da hava yolu aşırı duyarlılığının daha da arttığını gösterir. Bu şiddetli hava yolu aşırı duyarlılığı, BAL numunelerindeki artan inflamatuar hücre seviyeleri ile ilişkilidir ve bu nedenle BAL, altta yatan inflamatuar hava yolu hastalığının doğasını araştırmak için son derece yararlı bir araçtır.
Özellikle yarış atlarında solunum sorunlarına bağlı düşük performans prevalansı önemlidir. Bu hayvan popülasyonundaki yaygın solunum anormallikleri arasında IAD, egzersize bağlı akciğer kanaması ve üst solunum yolu fonksiyon bozukluğu yer alır. Bu bağlamda IAD, standartların altındaki atletik performansa, yarış veya antrenmanın kesintiye uğramasına ve sonuçta spor kariyerinin erken sona ermesine önemli bir katkıda bulunur. Yaşlı atlardan (>10 yaş) alınan akciğer örneklerinin histolojik incelemesi, bu yaş grubunda bulaşıcı olmayan IAD'nin önemli bir prevalansını ortaya çıkardı. Bu nedenle IAD, tüm yaş gruplarındaki ve spor disiplinlerindeki atların sağlığı ve performansında önemli bir rol oynar. Bu tür inflamasyonun doğasını ve kapsamını belirlemek için bronkoskopi ve bronkoalveoler lavaj, her durumda uygun tedavi ve prognozu belirlemek açısından son derece önemlidir.
Daha az yaygın olan ancak aynı zamanda her yaştaki performans atları için önemli olan patolojiler, akciğer apseleri ve parapnömonik efüzyonlar gibi septik akciğer hastalıklarıdır. Apseler genellikle akciğerin sağ veya sol kaudal lobunun kranyal kısmında lokalize olur." Bu hastalıklar, vücut ısısının artması, iştahsızlık ve göğüste palpasyonda ağrı olması nedeniyle klinik olarak kolayca tanınabilir. Bronkopnömoni veya akciğer şüphesi Apse radyografi ile doğrulanır. Ancak bu tür hastalarda -Bronkoskopinin hem teşhis hem de tedavi amaçlı değeri vardır. Bronkoskopi sırasında alt trakeadaki kırmızımsı kahverengi mukoza salgısı, endoskopun bu koleksiyonun etrafında dikkatlice hareket ettirilmesiyle kolayca tespit edilir. Bu salgılara dokunmamaya dikkat ederek, genellikle rengi bozulmuş mukopürülan salgı şeridini takip etmek ve spesifik segmental bronşiyal kaynağı belirlemek mümkündür. Daha sonra, bronkoskopun biyopsi kanalı kullanılarak spesifik bronşa bir polietilen kateter yerleştirilebilir. bakteri kültürü ve sitolojik analiz için steril bir salgı örneği. Bu prosedür tamamlandıktan sonra, etkilenen bronşa küçük bir hacimde sıvı (2 veya 3 enjeksiyonda yaklaşık 200-250 ml) verilebilir ve fazla eksüdanın uzaklaştırılması için hemen aspire edilebilir. Bu işleme bronkoalveoler lavaj değil, hava yollarının "tuvalet" adı verilir. Bu prosedür, bakteriyel saldırıyı azaltarak ve akciğerin etkilenen bölgesinde eksüdatif aşırı yükü azaltarak terapötik faydalar sağlar. Sıvının son aspirasyonundan sonra ve endoskopu çıkarmadan önce, etkilenen bölgeye lokal olarak bir doz çözünmüş antibiyotik enjekte edilebilir. Bu prosedür, sistemik tedavi ile kombinasyon halinde bakteriyel bronkopnömoni tedavisinin bir bileşeni olarak her gün veya günaşırı tekrarlanabilir.

BRONKOALVEOLAR LAVAJ PROSEDÜRÜ

BAL çoğu atta hafif sedasyon (ksilazin 0,3-0,5 mg/kg IV veya romifidin 0,03-0,05 mg/kg IV) ve lokal anestezi ile hava yolu anestezisi (epinefrinsiz %0,4 lidokain) altında yapılabilir. Bu işlem 1,8-2 m'lik bir bronkoskop veya özel bir BAL tüpü (Bivona Medical Technologies, Gary, Ind.) kullanılarak gerçekleştirilebilir. Bronkoskop veya BAL tüpü trakea ile temas ettiğinde trakeal bifürkasyona ulaşmak genellikle öksürüğe neden olur. Bu nedenle bu aşamada bifürkasyondaki öksürük reseptörlerini duyarsızlaştırmak için önceden ısıtılmış 60-100 ml lidokain solüsyonunun (%0,4 epinefrinsiz) infüze edilmesinde fayda vardır. Bu infüzyondan sonra endoskop veya BAL tüpü aşırıya kaçmadan dikkatli bir şekilde yerleştirilir. kuvvet (bu, daha fazla ilerlemeye karşı direncin derecesine göre belirlenir) daha derine uygulanır. Önceden ısıtılmış salin (200-300 ml) hızla akciğere verilir ve ardından aspire edilir.
İnfüzyon için toplam salin solüsyonu hacmi, her bolus arasında mümkün olduğunca fazla sıvı almaya çalışırken iki ayrı boluse bölünmelidir. Genel olarak toplam infüzyon hacminin %40-60'ının geri dönüşü tatmin edici bir BAL'a işaret eder. İlerlemiş hastalığı olan atlarda küçük hacimler toplanır ve daha az köpük (yüzey aktif madde) bulunması eğilimi daha azdır. BAL sıvısı örnekleri daha sonra havuzda toplanır ve alındıktan sonraki 1 saat içinde işlemenin mümkün olmaması durumunda buz üzerinde tutulur. Sıvı, herhangi bir pıhtılaşma kalıntısını veya renk değişikliğini tanımlamak için makroskopik olarak değerlendirilmelidir. Bir veya iki serum veya EDTA tüpü VAL sıvısıyla doldurulur ve santrifüj edilir (10 dakika boyunca 1500 rpm); Süpernatantı çıkardıktan sonra, bir damla tortudan smearlar hazırlanır ve bunlar daha sonra havayla kurutulur. Smear hazırlanırken hücresel morfolojinin iyi korunmasını sağlamak için slaytlar küçük bir masa üstü fan kullanılarak hızlı bir şekilde havayla kurutulmalıdır. Bu şekilde hazırlanan smearlar, küçük hücresel değişikliklerle oda sıcaklığında 8-10 aya kadar saklanabilir. Havada kurutulmuş yaymalar, hücresel ve hücresel olmayan bileşenlerin yorumlanması için Diff-Qnik, Wright-Giemsa, May Grmnwald, Leishman veya Gram boyalarıyla boyanabilir. Hücresel profil ve morfoloji, hava yolu hasarının doğası, inflamasyon ve akciğerin enfeksiyona veya yabancı antijenlere karşı immünolojik tepkisi hakkında ipuçları sağlayabilir.

BAL'DAKİ HÜCRELERİN DİFERANSİYEL SAYIMI VE YORUMLANMASI

Sahada uygulanan sıvının hacmi sıklıkla VAL başına 60 ila 300 ml steril salin arasında değişir. Ek olarak şiddetli bronkospazmı olan atlarda çekilen sıvının hacmi önemli ölçüde azalabilir. Bu koşullar nedeniyle, seyreltme etkisi, çekirdekli hücrelerin toplam sayısının doğru bir şekilde sayılmasını zorlaştırır ve TaKoii değerlerinin geniş aralığı göz önüne alındığında, akciğerlerdeki inflamatuar durumların yorumlanmasında sayımın klinik değeri çok azdır ve tanı değeri yoktur.

Öte yandan, hücre tiplerinin diferansiyel bolluğu seyreltmeden büyük ölçüde etkilenmez ve belirli hücre popülasyonlarındaki patolojik artışları karakterize etmek için değerlidir. Böylece, diferansiyel hücre sayımının yardımıyla, solunum yollarının septik, septik olmayan ve viral inflamatuar hastalıklarının karakteristik özelliklerini tanımlamak mümkündür ve bu, her özel durumda terapötik yaklaşıma karar verilmesine yardımcı olur. Sağlıklı atlarda, amfizemli atlarda ve performansı düşük performans atlarında diferansiyel BAL hücre bolluğu için değer aralıkları oluşturulmuştur. Karşılık gelen grupların her birinde karakteristik sitolojik özellikler mevcuttur.

Sağlıklı atlarda diferansiyel hücre sayımı

Diferansiyel BAL hücre sayımlarının aralıkları, solunum yolu hastalığından muzdarip olmayan atlardan BAL örnekleri alınarak belirlendi ve çeşitli yöntemlerle doğrulandı. klinik muayene, solunum fonksiyonunun test edilmesi ve bazı durumlarda histamin aerosolü ile bronkoprovokasyona yanıt olarak hava yolu aşırı duyarlılığının olmaması dahil (Şekil 8.2-1). Genç atlarda (6 yaşında), nötrofil popülasyonu, makrofaj ve lenfosit popülasyonunun yüzdesinde buna karşılık gelen bir azalmayla birlikte (yukarıda açıklanan teşhis yöntemlerine göre) sağlıklı hayvanların ortalama %15'ine kadar çıkabilir.

Diferansiyel hücre sayılarında sapmalar

Amfizem sendromu, karakteristik bir geçmişi, klinik belirtileri, anormal solunum fonksiyon testleri ve hava yolu aşırı duyarlılığı olan yetişkin atlarda yaygın olarak teşhis edilen bir solunum hastalığıdır. Amfizem alevlenmesi olan atların BAL sıvısında en az %23 nötrofil bulunur (Şekil 8.2-2). Bununla birlikte, bu gibi durumlarda nötrofiller sıklıkla tüm inflamatuar hücrelerin diferansiyel bolluğunun üçte birinden fazlasını oluşturur ve klinik sendromda ve yukarıda bahsedilen hava yolu aşırı duyarlılığında önemli bir rol oynar. Amfizemli atlardan alınan BAL sitoloji örnekleri sıklıkla birçok toksik olmayan ve apoptotik (yaşlanmış) nötrofil içeren bol miktarda mukoid bir arka plana sahiptir. bu balçık içinde hapsolmuş. Amfizem hastası atların BAL sıvısında nötrofil sayısının yanı sıra toplam mast hücreleri, eozinofiller, lenfositler, makrofajlar ve epitel hücrelerinin sayısında da önemli bir artış vardır. Bu hücrelerin nötrofillerden ayrı olarak tanınması ve değerlendirilmesi gerekir. Amfizemden muzdarip atlarda, glandüler yüksek hücresel bileşenlere ek olarak, Kurschmann bobinleri gibi hücresel olmayan yapılar, şiddetli iltihaplanma nedeniyle mukoza zarının hasar görmesi sonucu genellikle pul pul dökülmüş epitel hücrelerinin sayısı artar. Solunum yollarının kronik nonseptik inflamatuar hastalığını gösteren BAL preparatlarında sıklıkla bulunur.

ÇÖZÜM

BAL, genç performans atlarında bulaşıcı olmayan inflamatuar hava yolu hastalığı ve yaşlı atlarda tekrarlayan hava yolu tıkanıklığı veya amfizem gibi klinik ve subklinik alt solunum yolu hastalıklarının teşhisine yardımcı olan güçlü bir yardımcı teşhis aracı olarak açıkça ortaya çıkmaktadır. Sağlıklı atlar için BAL hücre farklılığı, genel kabul görmüş standart prosedürler kullanılarak iyi bir şekilde belirlenmiştir ve sitolojik profillerin normal değerlerden herhangi bir sapması, çok çeşitli septik olmayan inflamatuar süreçlerin tanınmasına yardımcı olacaktır. Hücre diferansiyel sitolojisi, çeşitli bozukluklarla ilgili daha fazla bilgi, gelecekte at klinisyenlerinin antrenörlere, sporculara ve at sahiplerine solunum sorunlarıyla ilgili daha doğru prognostik bilgiler sağlamasına olanak tanıyabilir. Ek olarak, solunum yollarında bol miktarda beyaz mukopürülan sekresyon ve hücresel diferansiyelde belirgin derecede artan nötrofil yüzdesi bulunan genç ve yetişkin spor atlarının çoğunda septik bir süreç tespit edilemez. Aksine, bu tür vakalar solunum yollarının septik olmayan inflamatuar bir hastalığını gösterir.

Orta ve şiddetli derecede obstrüktif ventilasyon bozuklukları için, bronkodilatatörlerin ve mukus tıkaçlarının reddedilmesini destekleyen ilaçların kullanılması yeterli değildir. Bazı durumlarda, bronş ağacının mekanik temizliği ve bronşların hedefe yönelik görsel lavajı endikedir.

Her segmental bronş ancak bronkoskopi ile yıkanabilir. Lokal anestezi altında bu mümkün değildir ve geleneksel mekanik ventilasyon yöntemleri anestezi altında bronkoskopi yapılmasına uygun değildir. Sadece hipoksi ve hiperkapninin daha da kötüleşmesini engellemekle kalmayacak, aynı zamanda bronkoskopun lümeni yoluyla endobronşiyal müdahalelerin eş zamanlı uygulanmasına rağmen optimal gaz değişimini de sağlayacak bir mekanik ventilasyon yöntemine ihtiyacımız var. Bu havalandırma yöntemi Sanders (1967) tarafından önerilmiştir. Bu enjeksiyon yöntemini kullanırken tüm segmentlerin sıralı ve kapsamlı bir şekilde durulanması mümkündür. Çift lümenli Carlens tüpü kullanıldığında bu koşullar sağlanamaz; yıkama körü körüne ve kontrolsüz yapılır.

Bronş lavajının kliniğe gerçek anlamda uygulanması Thompson ve Pryor'un (1964, 1966) önerisiyle ilişkilidir. Küçük ve orta boy bronşların tıkanıklığını açmak için Tpotrzop, anestezi altında bronkoskopi altında segmental bronşları tek tek kateterize etti, içlerine basınç altında 50 ml sıvı enjekte etti ve hemen aynı kateterden emdi. Sıvı enjeksiyonu, bronşlardaki pıhtıların mekanik olarak uzaklaştırılmasını mümkün kıldı. Lavajın tamamı 800-1500 ml gerektirdi, üçte biri geri emilebildi ve geri kalanı emildi. Thompson, pH'ı normalleştirmek için tuzlu su çözeltisi kullandı ve sodyum bikarbonat, proteolitik enzimler ve deterjanlar ekledi.

Thompson ve arkadaşlarına (1966) göre hastaların en ağır durumu, bronş lavajına kontrendikasyon oluşturmaz çünkü en iyi sonuçlar neredeyse ölmekte olan hastalarda elde edilir. Bronş lavajının modifikasyonunun kullanımıyla ilgili kendi deneyimimiz, bu tür bronkolojik yardımın olumlu değerlendirmesini tamamen doğrulamaktadır. Ancak rutin bronkoskopi teknikleri, solunum bronkoskopları kullanılsa bile güvenilir koşullar sağlamaz. Ana dezavantaj, bronşların segmental lavajı için, bronkoskopun görüntüleme penceresinin açılması nedeniyle solunum devresinin tekrar tekrar basınçsızlaştırılmasının gerekli olmasıdır. Status astmatikus ve hipoksik koma durumunda mekanik ventilasyonda herhangi bir duraklama kabul edilemez. Solunum bronkoskopu kullanılarak yüksek inspiratuar basınç oluşturularak status astmatikus sırasında hastaları ventile etmek zordur.

Kliniğimizde yapılan araştırma, orijinal Thompson teklifinin tüm avantajlarını tamamen koruyan, ancak hasta-bronkoskop-cihazının uzun süreli basınçsızlaştırılması dönemleri de dahil olmak üzere sürekli ve etkili mekanik ventilasyon koşulları altında bir seçeneği seçmemize olanak sağladı. sistem.

Bu yöntemin zorluğu bronkoskopun açık görüntüleme penceresinden gaz sızıntısını önlemektir. Sanders'ın önerisi, bronkoskop tüpünde yönlendirilmiş bir oksijen akışının oluşturulmasını içeriyordu (Şekil 11). Bunu yapmak için tüpün proksimal kısmına yerleştirilmiş bir enjeksiyon iğnesi yoluyla oksijen enjekte edilir. İnce bir iğnenin direnci yüksektir, bu nedenle, intratrakeal basıncı onlarca santimetre su sütunu kadar artırabilen yeterince güçlü bir oksijen akışı oluşturmak için, enjeksiyon girişinde birkaç atmosferlik bir basınç oluşturulmalıdır. iğne. Bronkoskop tüpü bir difüzör görevi görür. Enjekte edilen gaz akışı sadece akciğerlere doğru gitmekle kalmaz, aynı zamanda kendisiyle birlikte hava da taşır (enjeksiyon), böylece inhalasyon sırasında sadece oksijen sızıntısı olmaz, aksine atmosferik hava emilir ve solunum karışımını seyreltir. Oksijen akışı periyodik olarak kesilir ve ardından atmosfere pasif bir nefes verme meydana gelir.

Pirinç. 11. Bronkoskopi sırasında akciğerlerin suni havalandırmasının enjeksiyon yöntemi sırasında gaz akışının yönü: Bronkoskopik tüpün enjeksiyon iğnesi yoluyla 1-oksijen beslemesi; 2-atmosferden hava girişi; 3 tüplü bronkoskop; 4-ses boşluğu; 5-trakea.

Mühendis L.B. Taflinsky ve ben özel bir enjeksiyon bronkoskopu ve zaman değiştiren aşamalara sahip bir otomatik enjeksiyon solunum cihazı tasarladık. Kullanılan değiştirilmiş enjeksiyonlu ventilasyon yöntemi, intratrakeal basıncın zorunlu ölçümünün yanı sıra aşırı basınç artışlarını önleyen bir blokaj cihazı, inhalasyon ve ekshalasyon süresinin ayrı olarak ayarlanması ve bronkologun yüzünün hastanın soluduğu havadan korunmasını sağlar.

Enjeksiyon yöntemini kullanan havalandırma, oksijen hortumunun sıkıştırıldığı oksijen besleme akışını bloke ederek veya hortumun içine yerleştirilmiş bir pnömatik geçiş anahtarı - bir anahtar veya özel bir solunum cihazı kullanılarak "manuel" olarak gerçekleştirilir.

Bu yöntemi kullanırken, endoskopik manipülasyonların mekanik ventilasyon parametreleri üzerinde neredeyse hiçbir etkisi yoktur ve bronkolog, bronkoskopun görüntüleme penceresi sürekli açıkken sürekli olarak çalışabilir. İnspirasyon sırasında intratrakeal basınç 15-40 cm suya çıkarılabilir. Art., daha yüksek basınç elde etmek mümkün olmasına rağmen. Hastanın status astmatikus nedeniyle durumu ne kadar ağırsa, inspirasyon sırasında o kadar yüksek basınç oluşturulmalıdır. Solunum hızı 1 dakikada 10-15'tir. Solunan karışımdaki oksijen içeriği düzenlenmelidir: aşırı ventilasyon-tıkanıklık durumlarında, saf nemlendirilmiş oksijenle ventilasyona ihtiyaç duyulur; diğer hastalarda solunan karışımdaki oksijen içeriği %50-70'e düşürülebilir (Şekil 1). 12).

Pirinç. 12. Enjeksiyonlu ventilasyon koşulları altında bronş lavajı sırasında kan gazları. A - başlangıç; B - entübasyondan önce ve saf O2 ile ventilasyon sırasında; B - 5 dakika sonra mühendis. maskeyle havalandırma; G - 10 dakika sonra mühendis. mekanik havalandırma; D - 15 dakikalık mekanik ventilasyondan sonra; E -bronkoskopi ve ekstübasyonun tamamlanmasından hemen sonra

Enjeksiyon ventilasyonu sırasında arteriyel kanın pO2'si hemen önemli ölçüde artar ve hiperkapni azalır. Bronkoskopun yerleştirilmesi sırasında sıklıkla arteriyel hipertansiyon meydana gelir, ancak bronkoskopi sırasında kan basıncının normalleşmesine yönelik bir eğilim vardır ve önceden mevcut olan kardiyak aritmi sıklıkla kaybolur.

Bronkoskopi ve lavaj, intravenöz barbitürat anestezisi altında gevşetici maddelerle, bazen ek olarak seduxen eklenerek yapılmalıdır. Bronkospastik bileşen belirginse ve ftorotanın ön inhalasyonu hastanın durumunu hafifletirse, bu tür hastalarda anestezinin indüksiyonu ve bakımı için ftorotan kullanılmalıdır. Ekstübasyon, solunumsal iyileşmenin ilk belirtileri ortaya çıktıktan sonra gerçekleştirilmelidir. Bronş lavajı için 15-25 dakika yeterlidir.

Bronşlar ılık salinle veya salinle karıştırılmış furagin-K çözeltisiyle yıkanmalıdır. Tipik olarak 800 ml'ye kadar sıvı tüketilir; sıvının yaklaşık üçte biri emilebilir. Bazı durumlarda sıvı o kadar hızlı emilir ki geri dönüşü önemsizdir.

Kural olarak, bronşiyal kalıplar şeklindeki çok sayıda küçük sosis şeklindeki beyaz pıhtılar, yıkama suları ile uzaklaştırılır (Şekil 13). Akciğerlerden sıvı salınımı bazen lavajdan sonraki ilk gün devam ederek öksürük ve balgam akıntısını hafifletir.

Pirinç. 13. Endobronşiyal bronkoskopik lavaj sırasında yıkanan bronş kalıpları

Status astmatikusu hafifletmek için bir veya daha az sıklıkla iki durulama gerekir. Hastalar, müdahalenin bitiminden birkaç saat sonra en büyük rahatlamayı fark ederler.

Tedavinin olumlu sonuçlarını pekiştirmek için farklı zamanlarda tekrar lavaj yapılmalıdır. Bronş lavajının kullanılması, alışkın olan hastalarda hormon dozunu azaltmayı ve bazı hastalarda steroid kullanımını bırakmayı mümkün kılar. Bronkodilatörlere karşı dirençte de bir azalma kaydedildi.

Şu anda, bronş lavajı, yani segmental lavaj, tıkalı küçük bronşların basınç altında sıvı ile hedefli yıkanması ve "rastgele durulama" değil, şiddetli bronşiyal astım ve status astmatikus hastalarının tedavisi için vazgeçilmezdir.

Bronkoalveolar lavaj(Fransız lavajı, Latince lavo'dan yıkama, yıkama) - sitolojik, mikrobiyolojik, biyokimyasal ve immünolojik çalışmalar için en küçük bronşların (bronşçuklar) yüzeyinden ve akciğerlerin alveolar yapılarından bir yıkama elde etmek için bronkoskopik bir yöntem. Bronkoalveolar lavaj Tanısal bir prosedür olan bronş lavajından - çeşitli hastalıklar (örneğin, pürülan bronşit, alveoler proteinozis, bronşiyal astım) için büyük ve küçük bronşların terapötik lavajından ayırt edilmelidir.

Sitolojik ve immünolojik yöntemler kullanılarak bronkoalveoler lavajın incelenmesi, hücre canlılığında, fonksiyonel aktivitesinde ve bireysel hücresel elementler arasındaki ilişkilerde belirli değişiklikler yapılmasını mümkün kılar, bu da akciğerlerdeki patolojik sürecin etiyolojisini ve aktivitesini değerlendirmeyi mümkün kılar. Spesifik hücrelerin ve cisimlerin oluşumuyla karakterize edilen hastalıklarda (örneğin, kötü huylu akciğer tümörleri, asbestoz, hemosideroz, histiyositoz X), bronkoalveoler lavajların sitolojik çalışmasının bilgi içeriği, biyopsinin bilgi içeriğine eşit olabilir. Bronkoalveoler lavajların mikrobiyolojik incelemesi tüberküloz ve pnömositoz patojenlerini ortaya çıkarabilir; biyokimyasal ile - hastalığın doğasına ve aktivitesine bağlı olarak proteinlerin, lipitlerin içeriğindeki değişiklikler, fraksiyon oranlarındaki orantısızlıklar, enzimlerin ve inhibitörlerinin aktivitesindeki bozukluklar. Bronkoalveolar lavajların incelenmesi için listelenen yöntemlerin kapsamlı uygulaması özellikle bilgilendiricidir.

En yüksek değer bronkoalveolar lavaj akciğerlerdeki yaygın süreçlerin teşhisi için; sarkoidoz (radyolojik değişikliklerin ve akciğerlerin bulunmadığı mediastinal sarkoidoz formunda, bronkoalveoler lavajın incelenmesi birçok durumda akciğer dokusuna verilen hasarın tespit edilmesini sağlar); yayılmış tüberküloz; metastatik tümör süreçleri; asbestoz; pnömositoz, ekzojen alerjik ve idiyopatik fibrozan alveolit; nadir hastalıklar (histiyositoz X, idiyopatik hemosideroz, alveoler mikrolitiazis, alveoler proteinoz). Bronkoalveolar lavaj akciğerlerdeki sınırlı patolojik süreçlerde (örneğin kötü huylu tümörler, tüberküloz) ve ayrıca kronik bronşit ve bronşiyal astımda tanıyı netleştirmek için başarıyla kullanılabilir.

Çünkü bronkoalveolar lavaj sırasında gerçekleştirilen bronkoskopi, kontrendikasyonları dikkate alınmalıdır. Çalışmanın riski tanıyı netleştirme gerekliliğini aşmamalıdır. Aslında bronkoalveolar lavaj Bronş ağacında hem klinik hem de endoskopik olarak belirlenen önemli miktarda pürülan içeriğin olması durumunda kontrendikedir.

Yürürken bronkoalveolar lavaj sert bir bronkoskop kullanarak ( pirinç. 1 ) borusunun içine metal bir kılavuz yerleştirilir (seçilen segmental bronşa bağlı olarak 20° veya 45° açıyla) ve içinden 7 veya 8 numaralı radyoopak kateter 3-4 ileri hareket ettirilerek yerleştirilir. santimetre 5.-6. sıradaki bronşlara veya sanki onları sıkıştırıyormuş gibi. Kateterin konumu bir X-ışını televizyon ekranından izlenebilir. 20'lik kısımlar halinde bir şırınga kullanarak kateterden akciğerin seçilen bölümüne ml pH'ı 7.2-7.4 ve sıcaklığı 38-40° olan steril bir izotonik sodyum klorür çözeltisine dökün.

Lavaj sıvısının hacmi, amaçlanan çalışmaları gerçekleştirmek için gereken bronkoalveoler lavaj miktarına bağlıdır. 20'den az kullanın ml yıkama solüsyonu pratik değildir, çünkü bu durumda bronkoalveolar yapılardan yeterli miktarda sıvı akması sağlanamaz. Kural olarak toplam çözüm miktarı 100-200'dür. ml. Solüsyonun her porsiyonunun verilmesinden sonra, yıkamanın vakumla aspirasyonu, bir elektrikli emme kullanılarak steril dereceli bir kaba gerçekleştirilir. Fiberoptik bronkoskopi sırasında, seçilen segmental bronşun ağzına yerleştirilen fiberoptik bronkoskop aracılığıyla yıkama sıvısı 50'lik dozlarda uygulanır. ml; aspirasyon fibrobronkoskopun biyopsi kanalından gerçekleştirilir.

Bronkoalveolar lavaj atravmatiktir, iyi tolere edilir ve uygulanması sırasında yaşamı tehdit eden herhangi bir komplikasyon görülmedi. sonrasında hastaların yaklaşık %19'unda bronkoalveolar lavaj Gün boyunca düşük dereceli ateş gözlenir. Nadir durumlarda aspirasyon pnömonisi gelişir.

Ortaya çıkan bronkoalveoler lavajın araştırma için hızlı bir şekilde uygun laboratuvarlara nakledilmesi gerekir. Bu mümkün değilse, yıkamayı -6° ila +6° arasındaki bir sıcaklıkta buzdolabında birkaç saat saklamak mümkündür; hücresel olmayan bileşenlerin incelenmesine yönelik swablar uzun süre dondurulabilir.

Sitolojik inceleme için 10 ml bronkoalveoler lavaj, alındıktan hemen sonra, 4 kat steril gazlı bez veya ince bir ağ üzerinden bir santrifüj tüpüne süzülür. Daha sonra 10 damla süzülmüş yıkama suyu bir saat camı üzerinde 1 damla Samson sıvısı ile karıştırılarak sayma haznesi doldurulur. Odadaki hücresel elementler sayılarak sayıları 1'e ayarlanır. ml kızarma Bronkoalveolar lavajın hücresel bileşimi (endopulmoner sitogram), bir daldırma merceği kullanılarak en az 500 hücrenin sayılmasına dayanarak, santrifüjleme yoluyla elde edilen lavaj sıvısı çökeltisinin mikroskobik incelenmesiyle belirlenir. Bu durumda alveoler makrofajlar, lenfositler, nötrofiller, eozinofiller ve bazofiller dikkate alınır. Bronş epitel hücreleri yıkamalarda sayıları çok az olduğundan sayılmaz.

Sigara içmeyen sağlıklı kişilerden alınan bronkoalveolar lavaj sıvısı ortalama %85-98 oranında alveolar makrofaj, %7-12 oranında lenfosit, %1-2 oranında nötrofil ve %1'den az eozinofil ve bazofil içerir; toplam hücre sayısı 1'de 0,2 × 10 6 ila 15,6 × 10 6 arasında değişir ml. Sigara içenlerde toplam hücre sayısı ve lökosit yüzdesi önemli ölçüde artar, alveoler makrofajlar aktif (fagositik) durumdadır;

Endopulmoner sitogramdaki değişiklikler akciğer hastalığının etiyolojisine ve aktivitesine bağlı olarak belli bir yöne sahiptir. Primer solunum yolu tüberkülozunda (bronkoadenit, miliyer pulmoner tüberküloz) ve sekonder akciğer tüberkülozunun akut formlarında alveoler makrofaj sayısında eşzamanlı bir azalma ile lenfosit sayısında orta derecede bir artışın (% 20'ye kadar) mümkün olduğu tespit edilmiştir. İnfiltratif tüberküloz). Kronik akciğer tüberkülozu olan hastalarda, bronkoalveolar lavajda azalmış veya normal lenfosit içeriğine sahip nötrofil sayısında (% 20-40'a kadar) bir artış gözlenir.

Ekzojen alerjik alveolitli hastalarda bronkoalveolar lavajın sitolojik bir çalışması, lenfosit sayısında %60 veya daha fazla bir artış olduğunu ortaya koymaktadır. En belirgin lenfositoz, hastalığın akut evresinde ve alerjenle yapılan inhalasyon provokasyon testinden sonra görülür.

İdiyopatik fibrozan alveolit, bronkoalveolar lavajdaki nötrofil içeriğindeki artış (% 39-44'e kadar) ile karakterize edilir. Bronşiyal astımda, bronkoalveoler lavajdaki eozinofillerin sayısı% 30-80'e ulaşır; bu, bronşiyal mukozanın alerjik iltihabı için objektif bir tanı kriteridir.

Kronik bronşitli hastalarda bronkoalveoler lavajdaki nötrofil sayısı artar, alveoler makrofaj içeriği azalır, lenfosit ve eozinofil düzeyi normal sınırlar içinde kalır. Kronik obstrüktif ve obstrüktif olmayan bronşitin alevlenmesi aşamasında, bronkoalveoler lavajdaki nötrofil içeriği ortalama% 42'ye yükselir ve remisyonun başlaması aşamasında nötrofil sayısı azalır. Pürülan bronşitin alevlenmesi olan hastalarda nötrofil sayısı keskin bir şekilde artar (% 76'ya kadar). alveolar makrofajların seviyesi azalır (%16,8'e kadar).

Kötü huylu akciğer tümörleri için. sitolojik inceleme sırasında hemosideroz, histiyositoz X. asbestoz, bronkoalveoler yıkamalarda ksantomatozis şu hastalıklara spesifik olarak tespit edilebilir: tümör hücrelerinin kompleksleri ( pirinç. 2 ), hemosiderofajlar ( pirinç. 3 ), histiositler, asbest cisimcikleri, ksantoma hücreleri.

Akciğer tüberkülozu olan hastalarda bronkoalveoler yıkamaların bakteriyolojik incelenmesi, vakaların% 18-20'sinde Mycobacterium tuberculosis'in büyümesinin elde edilmesini sağlar. Mikroskobik olarak, immün yetmezliği olan hastalarda pnömoninin etken maddesi olan Pneumocystis carinii, Papanicolaou boyaması ve gümüş emdirme kullanılarak bronkoalveoler yıkamalarda tanımlanabilir.

Akciğer tüberkülozu, akciğer sarkoidozu, eksojen alerjik alveolit, kronik bronşitli hastalarda bronkoalveoler lavajların biyokimyasal bir çalışmasında, proteazların (elastaz, kollajenaz) ortalama aktivitesi normu aşmaktadır. Proteoliz inhibitörlerinin (a 1-antitripsin) aktivitesi keskin bir şekilde azalır veya yoktur. Yüksek elastaz aktivitesi, akciğerlerde distrofik süreçlerin (amfizem ve pnömoskleroz) gelişmesine eşlik eder. Elastazın incelenmesi, bu süreçlerin gelişiminin ilk aşamalarını belirlememize ve tedaviyi derhal gerçekleştirmemize olanak tanır. Akciğer tüberkülozu ve kronik bronşitli hastalarda, bronkoalveoler lavajlarda alveolar astarın yüzey aktif tabakasının temelini oluşturan fosfolipitlerin içeriğinde bir azalma bulunur. Akciğer tüberkülozunun küçük formlarında bu, belirli bir sürecin aktivitesi için ek bir test görevi görebilir.

T ve B lenfositleri, bağışıklık kompleksleri dahil olmak üzere bronkoalveolar lavajların diğer bileşenlerinin incelenmesi esas olarak bilimsel amaçlarla gerçekleştirilmektedir.

Kaynakça: Avtsyn A.P. ve diğerleri Endopulmoner sitogram, Sov. Med., No. 7, s. 8, 1982, bibliogr., Gerasin V.A. ve diğerleri. Tanısal bronkoalveolar lavaj. Ter. arkh., No. 5, s. 102, 1981, kaynakça; Diagnostik bronkoalveolar lavaj, ed. A G. Khomenko. M., 1988, bibliyografya.