Sitolojik inceleme ve onkolojideki önemi. Sitolojik inceleme nazik bir erken tanı yöntemidir. Kısaca sitolojik inceleme yöntemleri.

Sadece bu hastalıklara maruz kalanlar değil, aileleri de kalıtsal (genetik) hastalıklardan büyük zarar görüyor. Ebeveynler bazen suçluluk duygusuyla eziyet çekerler, bu da onları alkole, uyuşturucuya iter ve boşanmaya yol açar. Hasta bir çocuğa bakmak zaman, enerji ve kaynak tüketir, bazen diğer çocukları normal ev ortamından mahrum bırakır.

Aynı zamanda genetik yöntemler kullanılarak hasta bir çocuğa sahip olma riskinin ne kadar büyük olduğunu belirlemek mümkündür. İnsan kalıtımını incelemek için çeşitli yöntemler vardır.

Genetik yöntem

Bu yöntemin temeli, belirli bir ailenin soyağacının incelenmesidir. Bu yöntem, hem normal hem de kalıtsal hastalıklarla ilişkili olan çeşitli insan özelliklerinin kalıtım kalıplarının oluşturulmasına yardımcı olur.

İkiz yöntem

Çift yumurta ikizleri arasındaki farklılıkların genotip, tek yumurta ikizleri arasındaki farklılıkların ise çevresel faktörler tarafından belirlendiği bilinmektedir. Bu nedenle ikiz çalışmaları yoluyla çevrenin ve kalıtımın, hastalıklar da dahil olmak üzere çeşitli özelliklerin gelişimi üzerindeki etkisini belirlemek mümkündür. Örneğin, hem tek yumurta hem de çift yumurta ikizleri kızamıktan muzdariptir; bu, hastalığın çevresel faktörlere, patojenin vücuda girişine bağımlılığını doğrular.

Difteri veya tüberküloz patojenlerinden kaynaklanır, ancak genotip bu hastalıklara yakalanma riskinde rol oynar. Ve eğer tek yumurta ikizlerinden biri bu hastalığa yakalanırsa, diğerinin de hastalığa yakalanması muhtemeldir.

Sitolojik yöntem

Sitolojik yöntem, sağlıklı ve hasta kişilerde kromozom yapısının mikroskobik olarak incelenmesine dayanmaktadır. Mayoz bölünmede kromozomların farklılaşmasının bozulduğu ve gametlerde bir fazla veya daha az kromozomun bulunduğu durumlarda (Down sendromu, Shereshevsky-Turner sendromu vb.) anormal sayıda cinsiyet kromozomu (46'dan fazla veya az) ortaya çıkar.

Biyokimyasal yöntem

Biyokimyasal yöntem, vücutta meydana gelen ve metabolizma (metabolizma) adı verilen biyokimyasal süreçlerin incelenmesine dayanmaktadır. Metabolik bozukluklarla (konjenital bozukluklar) ilişkili bilinen birçok kalıtsal hastalık vardır; bunların arasında albinizm de vardır.

Açıklanan yöntemlerin genetik ve tıpta kullanılması, vücutta meydana gelen bazı bozuklukların hücresel düzeyde zamanında tespit edilmesini mümkün kılar. Böylece, bir kan testi, belirli gen bozukluklarının (mutasyonların) neden olduğu Tay-Sachs hastalığı, orak hücreli anemi, hemofili, kistik fibroz gibi genetik anormallikleri belirlemenizi sağlar.

Diğer genetik anomaliler, mutasyon genlerinin varlığından değil, mayoz sırasında kromozomların davranışının ihlalinden (Down sendromu), yani: mayoz sırasında 21. veya 22. kromozom çiftinin ayrılmamasından kaynaklanır. Bu hastalığa sahip bireyler bir dizi karakteristik özellik ile ayırt edilir: zihinsel gerilik, gözlerin köşesinde bir deri kıvrımının varlığı, tıknaz bir vücut ve neşelilik.

Şu anda genetik ve tıp, hamileliğin 16. haftasında fetüsteki anormal sayıda kromozomun tespit edilmesini sağlayan bir tekniğe sahiptir. Bunun için amniyotik kesenin delinmesiyle amniyotik sıvıdan bir örnek alınır, hücreleri incelenir ve içlerinde kromozomal anormallikler olup olmadığı belirlenir.

Son zamanlarda bazı araştırmacılar laboratuvar hayvanlarında bazı kalıtsal hastalıkların görülme sıklığını azaltmayı başardılar. Bu, zamanla insandaki bazı genetik hastalıkların cenin aşamasında bile tespit edilip tedavi edilebileceğine dair umut veriyor.

Anufriev Igor Ivanovich göğüs hastalıkları uzmanı - Rostov Devlet Tıp Üniversitesi Fizyoloji ve Göğüs Hastalıkları Bölümünde Doçent, Rostov Devlet Tıp Üniversitesi Göğüs Hastalıkları Anabilim Dalı Başkanı.

Bokhanova Elena Grigorievna - Terapötik bölüm başkanı, tıp bilimleri adayı, en yüksek kategorideki doktor, Rostov Devlet Tıp Üniversitesi iç hastalıkları propaedötiği bölümünde asistan, göğüs hastalıkları uzmanı.

Kirtanasova Lyudmila Nikolaevna, en yüksek yeterlilik kategorisine sahip bir göğüs hastalıkları uzmanıdır.

Sayfa editörü: Sitolojik araştırma yöntemi: Turbeeva E.A.

***********************

"Solunum sistemi hastalıkları Cilt 1" kitabı. (Yazar N.R. Paleeva).

Akciğer hastalıklarının tanısında sitolojik yöntem önemli bir yer tutar. Sitolojik araştırmalar için materyal elde etmeye yönelik çok sayıda yöntem iki gruba ayrılabilir:

• 1) birincil odak noktasından materyalin incelenmesine izin vermek - bronşlar, akciğerler: balgam muayenesi, bronkoskopi sırasında elde edilen materyal (BAL dahil), bronşiyal kateterizasyon, transtorasik ponksiyon, açık akciğer biyopsisi (bir doku parçasının izleri);
• 2) patolojik sürecin akciğerlerin ötesine yayılmasının sağlanmasına izin vermek: plevral, perikardiyal, asit sıvısı, bölgesel delikler (subkarinal ponksiyon) ve periferik lenf düğümleri, diğer organlardaki metastatik odaklardan gelen materyalin incelenmesi.

Sitolojik çalışmaları organize etmek için bilimsel temelli bir sistem, rasyonel taktikleri (algoritmayı) gerektirir. Sitolojik inceleme algoritması tüm tanısal algoritmanın ayrılmaz bir parçasıdır (bkz. Bölüm 30). En önemli ilkeleri şunlardır: Etkili ve güvenli yöntemlerin öncelikli kullanımı, minimum sayıda materyal örneği ile mümkün olan en kısa sürede doğru sitolojik tanının elde edilmesi için tek seferlik karmaşık çalışmaların tercih edilmesi, bilginin sürekliliği. Ayrıca patolojik sürecin seyrinin özellikleri ve kurumun X-ışını endoskopik ekipmanının seviyesi de dikkate alınmaktadır.

Bronşların ve akciğerlerin hücresel elemanlarının heterojenliği, solunum yolu epitelinin yüksek plastisitesi, akciğer hastalıklarının çeşitliliği, diğer organların malign tümörlerinin akciğere sık metastazı ve son olarak yukarıdakilerin kullanımı materyal elde etme yöntemleri - tüm bunlar sitolojik tabloda geniş farklılıklar yaratır; bunun doğru değerlendirilmesi, klinisyenin Sitoloğun özel deneyim ve bilgisine sahip olmasını gerektirir.

Sitolojik paternlerin benzersizliği ve elde edilen bilgi düzeyi dikkate alınarak, balgamın, BALF'nin ve biyopsi sırasında elde edilen materyalin sitolojik incelemesi aşağıda ayrı ayrı tartışılmaktadır.

Balgamın Sitolojik Çalışması

Balgamın sitolojik analizi çok ümit vericidir, çünkü hücresel bileşimi genellikle bronşlarda ve akciğerlerde patolojik sürecin özelliklerini yansıtır ve birçok durumda tedavinin seçiminin ve sonuçlarının bağlı olduğu morfolojik tanıyı netleştirmeyi mümkün kılar [Kazantseva V. M. 1980; Klyukina L.B., Tulchinsky B.R., 1983].

Balgamın sitolojik incelemesi, materyal elde etmek için ek araçsal müdahaleler gerektirmez; Hem hastanede hem de ayakta tedavi bazında hastalığın dinamiklerinde zorluk yaşamadan tekrar tekrar elde edilebilir.

Sitolojik incelemenin başarısı öncelikle balgamın toplanması, taşınması, saklanması, hazırlanması ve işlenmesi kurallarına uyulmasına bağlıdır.

Ağzın üç kez su ve ardından% 1'lik alüminyum şap çözeltisi ile ön durulanmasının ardından aç karnına balgamın balgamla toplanması önerilir. Balgamın sabah kısmı hücresel bileşimini en iyi şekilde yansıtır, çünkü ortaya çıkan salgı gece boyunca birikir.

Balgam, hücresel elementlerin eşit olmayan şekilde dağıldığı homojen olmayan viskoz bir sıvıdır. Bu, hücrelerin görüş alanlarında tekdüze dağılımını ve stabil koşullar altında sayılmasını gerektiren kantitatif sitolojik çalışmaların yürütülmesini zorlaştırır. Bu bakımdan çalışmadan önce balgamın homojenleştirilmesi gerekmektedir.

Homojenizasyonun yaygın yöntemlerinden biri balgamın içine 1:1 oranında %0,5'lik alkali solüsyonu eklemek ve ardından 10-15 dakika çalkalamak; daha sonra karışım 55-56 °C sıcaklıktaki su banyosunda 30 dakika bekletilir. Ancak alkali ve sıcaklığın etkisi altında bazı hücreler yok edilir ve bu da çalışmanın sonucunu etkiler. Balgamın 1:1 oranında %1-2,5 sulu dimeksit çözeltisi eklenerek homojenleştirilmesi daha tavsiye edilir.

Dimexide dokuya kolayca nüfuz eder ve incelenen malzemenin hücresel yapılarının iyi korunmasını sağlar. Homojenleştirme, bir kompresörden bir kanül aracılığıyla kapaklı bir tükürük hokkasına sağlanan bir hava akımıyla da yapılabilir. Süpernatan atılır ve hücre pelleti sonraki sitolojik çalışmalara hazırlık amacıyla kullanılır.

Doğal balgam preparatı hazırlamak için önemli olan hücre sedimentinin cam slayt üzerine dağılımıdır. Bir kapak camı uygulandığında hücre tortusunun eşit ince bir tabaka halinde dağılması ve kapak camının kenarlarından taşmaması için yeterli malzeme almanız gerekir. Preparasyonlar hemen incelenmezse kurumasını önlemek için nemli bir odaya yerleştirilirler.

Doğal balgam preparatının sitolojik incelemesinin amacı materyalin ön değerlendirmesidir. Yerli preparatlarda bazen çıplak gözle görülebilen Kurshman spiralleri kolaylıkla tespit edilir. Bunlar, açık renkleri nedeniyle koyu balgam topaklarında aranması gereken bir lökosit mantosu, sütunlu epitel hücreleri, Charcot-Leyden kristalleri ile kaplı, kıvrımlı, parlak bir merkezi ipliktir.

Balgamda kristal oluşumu için, onu 24-48 saat boyunca bir kapak camı altında, yani havaya erişim olmadan saklamak gerekir. Kristallerin varlığı genellikle balgamdaki eozinofil içeriğinin artmasıyla ilişkilidir.

Akciğerin nekrotik parçaları, mikroskop altında alveoler bir yapının ve toz gibi inert kalıntıların tespit edildiği koyu renkli doku artıklarıdır. Nekrotik akciğer dokusu, akciğerlerin (apse, kangren) bulaşıcı tahribatının karakteristiğidir.

Tümörlerin tanısında önemli olan atipik hücreler, doğal balgam preparatlarında da tespit edilebilmektedir.
Farinks ve ses tellerinin skuamöz epiteli, beyaz kan hücrelerinden 10-15 kat daha büyük olan çokgen hücrelerdir.

Doğal preparatlarda hava yollarında baskın olan siliyer epitel hücreleri, silia kenarlı silindirik veya kübik hücrelerin görünümüne sahiptir; Genellikle oval şekilli olan çekirdek, hücrenin karşıt (bazal) kısmında bulunur. Doğal preparatta lökositleri (nötrofiller, lenfositler) ayırt etmek neredeyse imkansızdır.

Bunun istisnası, içlerindeki kaba granüllerin varlığı nedeniyle diğer hücrelerden daha koyu olan eozinofillerdir. Kırmızı kan hücreleri, mukus şeritlerinde bulunan yuvarlak oluşumlardır. Balgamda her zaman neredeyse tek kırmızı kan hücresi bulunur. Doğal preparattaki pulmoner makrofajlar diğer hücrelere göre daha büyüktür ve çeşitli kapanımlar içerir.

Yıkıcı tüberküloz, akciğer apsesi ve malign neoplazmları olan hastaların balgamında elastik lifler bulunur. Bunları tespit etmek için, yerli ilacın önce düşük, sonra yüksek büyütme altında kapsamlı bir şekilde incelenmesi gerekir. Açık renkli bir arka planda elastik lifler daha koyu renkte görünür. Işığı iyi kıran ince, kıvrımlı ipliklerdir.

Sabit boyalı balgam preparatlarının sitolojik incelemesinden ek bilgi elde edilir.
Santrifüj ölçüm tüpüne 0,1 ml balgam alınır ve bu miktardan iki cam lam üzerine smear hazırlanır ve bir bardağa 0,5 ml çökelti uygulanır ve camların birbirine göre yer değiştirmesi ile eşit olarak dağıtılır (kalınlığı). bir cam üzerindeki hücre çökeltisi yaklaşık 50 µm'dir).

Ortaya çıkan smear kurutulur, metanol ile sabitlenir ve Romanovsky-Giemsa'ya göre boyanır. Hücreler mikroskop altında 200 (göz merceği 10, objektif 20) ve 280 (göz merceği 7, objektif 40) büyütmede sayılır.

Ayrıca Pappenheim yöntemini, metilen mavisini ve asureosin karışımını da kullanabilirsiniz. İncelenen balgamın boyalı preparatlarında, kanın hücresel elemanları (eritrositler, nötrofilik lökositler, eozinofilik lökositler, lenfositler), makrofajlar ve tabakalı skuamöz ve kolumnar epitel hücreleri tespit edilir.

Ağız boşluğu ve farenksin tabakalı skuamöz epitelinin hücreleri, çokgen bir şekle, nispeten küçük, merkezi olarak yerleştirilmiş çekirdeklere ve oksifilik sitoplazmaya sahiptir. Daha derindeki katmanların hücreleri oval veya yuvarlak şekillidir; kolayca tanınırlar.

Hücresel elemanların farklılaşmasında bazı zorluklar, örneğin pnömonili hastalarda klinik iyileşme döneminde ortaya çıkar. Kirpiklerini ve karakteristik silindirik şeklini kaybetmiş bronşiyal epitel hücrelerinde artış vardır. Bu fenomen, iltihaplanma sürecinin bir sonucu olarak hiperplastik olan yenilenen bronşiyal epitelyumun soyulması ile açıklanmaktadır.

Bronş epitelinin tahrişine bağlı olarak akciğerlerdeki kronik inflamatuar süreçler sırasında balgamda çok çekirdekli epitel hücreleri görülür.

Balgamın sitolojik incelemesi sırasında atipik hücrelerin tespiti özel ilgiyi hak eder. Bu sadece kötü huylu bir neoplazmı önermeyi değil aynı zamanda histolojik tipini de değerlendirmeyi mümkün kılar (daha fazla ayrıntı için bkz. bölüm 28.3).

Atipik hücreler ayrıca, dokuda belirgin bir proliferatif reaksiyon ile kronik tüberküloz formlarında da ortaya çıkabilir, ancak tüberkülozda balgamın karakteristiği olan genel olarak az sayıda hücresel element vardır. Ancak ek çalışmalara dayanarak tanının netleştirilmesi gerekmektedir.

Sabit preparatlarda kırmızı kan hücreleri çift konturlu sarımsı diskler şeklinde görünür. Sayıları azdır ve tanısal değerleri yoktur. Hemoptizi sırasında kırmızı kan hücreleri çok sayıda bulunur.

Hücresel formlardaki lökositlerin ana kısmı, yuvarlak, daha az sıklıkla düzensiz, granüler protoplazmalı bir şekle ve birkaç parçadan oluşan bir çekirdeğe sahip olan nötrofillerdir.

Akut pnömonide ve kronik bronşitin alevlenmesinde artan sayıda dejeneratif lökosit formu ve yüksek miktarda alveoler makrofaj içeriği gözlenir. Akciğerlerdeki yıkıcı süreçler sırasında, balgamda, çekirdeklerin parçalanması ve sitoplazmanın tahrip edilmesiyle birlikte nötrofillerin dejeneratif formları baskındır. Sürecin olumlu bir şekilde ilerlediğinin bir işareti, değişmeden kalan nötrofil sayısındaki artıştır.

Eozinofillerin saptanması, balgamın asureozin veya eozin-metilen mavisi ile özel olarak boyanmasını gerektirir; burada bu hücrelerin tekdüze granülerliği kırmızıya boyanır. Eozinofiller balgamda son derece dengesiz bir şekilde dağılmıştır, bu nedenle onları tanımlamak için bazen numunenin tamamını incelemek gerekebilir. Eozinofilik granülositler, bronşiyal astımlı, astımlı bileşenli kronik bronşitli hastaların balgamında daha sık tespit edilir.

Labrositler %1'lik alkol toluidin mavisi çözeltisiyle boyanır. Varlıkları bronşiyal astımı olan hastaların balgamının karakteristiğidir. Hastalığın alevlenmesiyle birlikte mast hücrelerinin degranülasyonu ve granüllerin renginde hafif bir yoğunluk dikkat çeker.

Romanovsky-Giemsa lenfositleri, içlerinde yoğun bir kromatin ağının bulunması nedeniyle yoğun bir şekilde boyanır. Hücreler yuvarlak bir şekle, mavimsi renkte küçük bir protoplazma kenarına sahiptir. Tüberkülozlu hastalarda, epitelde önemli değişiklikler olan kronik bronşitli hastalarda lenfosit içeriğinde artış gözlenir [Shlopov V. G. ve diğerleri, 1986].

Alveolar makrofajlar eksantrik yerleşimli çekirdeğe ve vakuollü sitoplazmaya sahip büyük hücrelerdir. Azur-eozin ile açık mavi renkte boyanırlar ve çeşitli kapanımlar içerirler. Balgamdaki sayıları sürecin evresine göre değişir.

Klinik açıdan fagositik hücrelerin sayısını ve fonksiyonel aktivitelerini belirlemek önemlidir. Pulmoner makrofajların fagositik aktivitesinin özellikleri, hasarlı lökositleri fagosite eden makrofajların toplam makrofaj sayısına oranının indeksi ile ve ayrıca intravital tripan mavisi boyama ile makrofajların canlılığının belirlenmesiyle ifade edilebilir.

Yöntem, ölü hücrelerin tripan veya metilen mavisi ile tanımlanmasına dayanmaktadır. Balgam 1:1 oranında %2,5 dimeksit çözeltisi ile karıştırıldıktan sonra 1500 rpm'de 10 dakika santrifüj edilir. Mikropipet içerisine 0,01 ml hücre süspansiyonu alınır, Fuchs-Rosenthal odasındaki toplam makrofaj sayısı sayılır ve bunlara göre ölü hücrelerin yüzdesi belirlenir.
1 ml balgamdaki toplam hücre sayısının belirlenmesi, bir hemasitometre kullanılarak Goryaev veya Fuchs-Rosenthal odalarında gerçekleştirilir [Zhuravlev A.V., 1980].

Balgam hücrelerinin daha ayrıntılı (ultrayapısal) analizi, iletim ve taramalı elektron mikroskobunun kullanılmasını gerektirir.

Diagnostik BAL, hücresel elementler, protein ve diğer bileşenleri içeren bronkoalveolar lavaj veya bronkoalveoler lavaj sıvısı (BALF) sağlar. Lavaja tabi tutulan alveollerin ve bronşların toplam yüzeylerinin oranı yaklaşık 20:1'dir, bu nedenle bronkoalveoler lavajın baskın bileşeni, yıkanmış alveolar içeriklerdir. Bir prosedür sırasında yaklaşık 106 alveolün içeriği yıkanır.

Hedeflere bağlı olarak, BALF çalışması, hücresel elemanların sayısını ve türlerini belirlemekle sınırlandırılabilir veya bunların alt yapısının, fonksiyonel aktivitesinin açıklığa kavuşturulması ve patojenik mikroorganizmaları tanımlamayı amaçlayan tekniklerin kullanılmasıyla desteklenebilir. Hücresel elementlerin santrifüjleme yoluyla uzaklaştırılmasından sonra elde edilen BALF'ın incelenmesi, Ig, enzimler, biyolojik olarak aktif maddeler ve diğer bileşenlerin içeriğinin belirlenmesini mümkün kılar.

Toplam hücre sayısını belirlemek için gazlı bezden süzülerek mukusu uzaklaştırdıktan sonra 1-2 ml BALF alınır. 1 ml BALF içindeki hücre sayısı hemasitometrede sayılır. Diğer sitolojik çalışmalar için, +4 °C sıcaklıkta santrifüjleme yoluyla elde edilen bir hücresel element çökeltisi kullanılır.

Romanovsky-Giemsa, hematoksilen-eozin veya diğer boyalarla boyanan ve mikroskobik incelemeye tabi tutulan çökeltilmiş hücrelerden yaymalar hazırlanır. Hücresel elementlerin (alveolar makrofajlar, lenfositler ve nötrofiller) oranı 200-500 hücre sayımına göre belirlenir.

Küçük alveoler makrofaj formları ile büyük lenfositler arasında daha doğru bir ayrım yapmak için özel teknikler kullanılabilir: nötr kırmızı boyama, hücrelerin fagositik yeteneğinin belirlenmesi. Alveolar makrofajların ve diğer hücrelerin ultra yapısının elektron mikroskobik incelemesi, hücresel elemanların% 1.25 glutaraldehit içinde sabitlenmesinden ve preparatların hazırlanmasından sonra gerçekleştirilir.

Aspire edilen BALF hacminin enjekte edilen sıvı hacmine göre %30 ila %80 arasında değişmesi ve alveolar içeriklerin seyreltme derecesini belirlemek imkansız olduğundan, protein ve diğer bileşenlerin mutlak içeriğini 1 ml'de belirlemek mümkün değildir. BALF'ın önemi nispeten azdır.

Elde edilen göstergeleri standartlaştırmak için, her zaman BALF'ta bulunan protein maddelerinin albümine oranı kullanılır. Albümin akciğerde sentezlenmez veya yok edilmez ve kan-alveolar bariyerini geçen serum proteinleri aralığında bir moleküler ağırlığa sahiptir.

Albümin oranı, kan serumundaki konsantrasyonla karşılaştırıldığında BALF'deki test bileşeninin içeriğinin artmış mı yoksa azalmış mı olduğuna karar verilmesini sağlar.

BAL verileri, materyal toplama tekniğinin özellikleri ve hücresel kompozisyonu ve diğer bileşenleri etkileyebilecek diğer faktörler dikkate alınarak değerlendirilir; bronşiyal hücresel elementlerin karışımı genellikle BAL sıvısının ilk kısmında daha belirgindir ve ikinci ve ikinci kısımda azalır. üçüncü!

Aynı zamanda alveolar hücresel elemanların içeriği tüm kısımlarda yaklaşık olarak aynıdır. Alveoler hücresel kompozisyonun daha doğru bir şekilde anlaşılmasının, BALF'ın ilk değil sonraki bölümlerinin incelenmesiyle sağlandığı genel olarak kabul edilir. Bronş ağacında iltihaplanma sürecinin varlığında, özellikle tanısal BAL'a kontrendikasyon olan pürülan bronşit durumunda, bronşiyal kökenli nötrofillerin karışımında bir artış gözlenir.

Norm olarak kabul edilen sitolojik göstergeler, araştırma yöntemlerindeki farklılıklar nedeniyle bazı değişkenliklerde farklılık göstermektedir. 1 ml BALF'deki toplam hücre sayısı yaklaşık 0,5-10-106'dır. Sigara içenlerde daha yüksek hücresel element içeriği gözlenir. Alveolar makrofajlar hücreler arasında baskındır (%93 ± 5).

Lenfositler çok daha az sıklıkla bulunur (%7 ± 1). Nötrofiller yalnızca tek hücrelerle temsil edilir (%1'den az). Diğer hücresel elementler (eozinofiller, mast hücreleri vb.) daha da nadirdir (%0,1).

Farklı tipteki lenfositlerin oranı periferik kandakine yaklaşık olarak benzerdir: T lenfositleri %73, B lenfositleri %7 ve T ve B lenfositlerini (boş hücreler) tanımlamak için kullanılan reaktiflerle etkileşime girmeyen lenfositler %19'u oluşturur. .

BAL sıvısının akciğer hastalıklarına yönelik tanısal yetenekleri büyük ölçüde BAL sıvısının hücresel bileşiminin incelenmesiyle ilişkilidir.
Sitolojik inceleme, karakteristik hücresel elementlerin tespitine dayanarak bazı akciğer hastalıklarının teşhis edilmesini mümkün kılar. Bu tür hastalıklar öncelikle alveolar makrofajlarda tuhaf kapanımların (X cisimciklerinin) oluştuğu histiyositoz X'i içerir.

Bu kapanımların tespiti, alveoler makrofajların ultra yapısının elektron mikroskobik incelemesi ve Te antijenine karşı monoklonal antikorlarla immünofloresan yönteminin kullanılmasıyla mümkündür. Preparasyonlar hematoksilen-eozin ile boyanırken, kalıntılar daha az net bir şekilde tanımlanır. Neoplastik akciğer hasarı, sıklıkla kompleksler halinde gruplar halinde bulunan BALF'deki tümör hücrelerinin tanımlanmasıyla teşhis edilebilir.

Patolojinin tipini açıklığa kavuşturmada belirli bir rol, hemosiderin birikimli alveoler makrofajların, yani. pulmoner hemosiderozun karakteristik yan fajları veya proteinozda gözlenen protein kapanımları olan alveolar makrofajların saptanması ile oynanır.

Bununla birlikte, benzer hücrelerin, özellikle de yan fajların diğer hastalıklarda (Goodpasture sendromu, vb.) tespit edilebileceği göz önüne alındığında, böyle bir sitolojik tablonun tanıyı açıklığa kavuşturmak için bir temel oluşturamayacağı, yalnızca Yaklaşık değer.

Nispeten sıklıkla BAL, çeşitli alveolit ​​formlarında akciğerlerdeki patolojik sürecin doğası ve aktivite derecesi hakkında bilgi elde etmek için bir yöntem olarak kullanılır. BALF'ın hücresel bileşiminin incelenmesinden elde edilen veriler ile histolojik bir çalışmanın sonuçlarının karşılaştırılmasına dayanarak, BALF'deki ve akciğerin interstisyel dokusundaki hücresel elementlerin oranının neredeyse aynı olduğu tespit edildi.

BALF'nin sitolojik incelemesi, yayılmış süreçlerin altında yatan iki ana alveolit ​​türü - nötrofilik ve lenfositik - fikri dikkate alınarak gerçekleştirilir. İdiyopatik fibrozan alveolit, asbestoz ve diğer hastalıklarda gözlenen nötrofilik tip alveolitin sitolojik belirtileri, alveolar makrofaj ve nötrofil sayısındaki artıştır.

Granülom oluşumunun eşlik ettiği ve sarkoidoz, ekzojen alerjik alveolit ​​​​vb. gibi hastalıklarda gelişen lenfositik alveolit, alveolar makrofaj ve lenfosit sayısındaki artışla kendini gösterir. Bazı akciğer hastalıklarında, lenfositik alveolitin gelişiminde en aktif rolü oynayan lenfositlerin alt tiplerinin belirlenmesi tanısal değere sahiptir.

Sarkoidozda bu alt tipler T4 lenfositlerdir (yardımcılar), ekzojen alerjik alveolitte ise Tg lenfositlerdir (baskılayıcılar).

Alveolitin formunun açıklığa kavuşturulmasına ek olarak, BALF'ın sitolojik incelemesi, sürecin aktivite derecesinin değerlendirilmesine olanak tanır ve hastalığın seyrini tahmin etmek için kullanılabilir. Alveolit ​​aktivitesi genellikle nötrofil veya lenfosit sayısındaki artışla orantılıdır.

Olumsuz prognostik semptomlar, yaygın sürecin yüksek aktivitesini gösteren, karşılık gelen hücrelerin yüksek içeriğine sahip, kalıcı bir BALF sitolojik tablosunu içerir. Ancak tek bir çalışma genellikle hastalığın prognozu hakkında bir sonuca varmak için yeterli değildir.

Devam eden tedavinin arka planına karşı tekrarlanan BAL sıvılarındaki sitolojik aktivite belirtilerinin yalnızca karşılaştırmalı bir değerlendirmesi, sürecin ilerlemesine veya stabilizasyonuna yönelik eğilimi yargılamayı mümkün kılar.

Yaygın süreçleri olan hastaların yaklaşık üçte birinde BALF'ın hücresel bileşiminde karakteristik değişiklikler yoktur.
Diagnostik BAL, akciğerlerdeki enfeksiyöz bir inflamatuar sürecin etken maddesini tanımlamak için, esas olarak immün yetmezliği olan hastalarda sözde fırsatçı enfeksiyonun gelişmesine neden olan mikroorganizmaları tespit etmek amacıyla kullanılabilir. Mikrobiyolojik araştırma yöntemleri Bölüm 24'te anlatılmaktadır.

BİYOPSİDEN ELDE EDİLEN MATERYALİN SİTOLOJİK ÇALIŞMASI.

Biyopsi sırasında elde edilen materyalin sitolojik incelemesinden elde edilen verilerin doğru değerlendirilmesi, verilerin toplanması için kullanılan yöntemlerin bazı ayrıntılarının dikkate alınmasını gerektirir (bkz. Bölüm 22).

Bronkoskopi sırasında materyal, lekeler, etkilenen bölgede bir fırça ile kazıma, bronş içeriğinin aspirasyonu, BALF, transbronşiyal ponksiyonlar ve biyopsi yapılmış bir doku parçasının izleri şeklinde elde edilir. Aspirat ve smear almak en az invazif yöntemdir ve bronş mukozasının yüzeysel alanlarını ve patolojik oluşumu incelemeyi mümkün kılar.

Smearları incelerken bazen patolojik odağın yüzeyinden yalnızca nekrotik kitlelerin elde edilebilmesi nedeniyle olumsuz bir sonuç elde edilebilir. Şüpheli bronş lezyonu alanının daha derin bölgelerini analiz etmek için bir fırça ile kazıma yapılır ve patolojik sürecin (örneğin bir tümör) peribronşiyal lokalizasyonu durumunda transbronşiyal bir ponksiyon yapılır.

Bronkoskopi sırasında biyopsi alınan bir doku parçasının baskılarının incelenmesi, birçok hastalığın morfolojik tanısının etkinliğini arttırır. Bronkoskopinin genel anestezi altında yapılması durumunda sitolojik incelemenin daha yüksek bilgi içeriğine sahip olduğu kanıtlanmıştır.

Bronşların kateterizasyonu bronkoskopi sırasında ve onsuz yapılabilir (burun içi olarak lokal anestezi altında; ikincisi ile hücrelerin en iyi şekilde korunması için sulu anestezik çözeltileri kullanılmamalıdır). Her iki yöntem de ortaya çıkan malzemenin doğası gereği benzerdir. Etkilenen bölgenin metal bir ip, kablo veya naylon fırça ile travmatize edilmesi, içeriğin basit bir şekilde aspirasyonuna tercih edilir.

Bir çalışma sırasında en az üç malzeme numunesi almak mantıklıdır. Kateterin çıkarılması sırasında akciğerdeki patolojik odaktan gelen materyal bronş salgıları ile seyreltildiğinden mikroskopiyi zorlaştırdığı için aspirasyon yapılmaz.

Başarılı kateterizasyonun ana koşulu, kateterin çapının ve bronşun uygunluğudur; 5-6. derece bronşların hasar görmesi ile sınırlı patolojik odaklarda kateterizasyon imkansız hale gelir.

Enstrümantal yöntemlerin avantajı, akciğerin hemen hemen her yerinden alınan materyalin hedefli olarak incelenmesine izin vermesi, yani patolojik sürecin lokalizasyonu hakkında bilgi sağlamasıdır. Balgam ve BALF'ın aksine, biyopsi materyali daha iyi koruma, slaydın birim alanı başına daha yüksek hücre konsantrasyonu ve ağız boşluğundan hücre karışımının bulunmaması ile karakterize edilir. Bu bakımdan mikroskopi daha az zaman gerektirir ve bu da hastaların klinik muayene koşullarında incelenmesinde önemlidir.

Hazırlanan smear'lar havada kurutulur, asureosin karışımları (Leishman, Pappenheim, Romanovsky - Giemso'ya göre) veya hematoksilen-eozin ile boyanır. Gerekirse mukus, yağ, demir, mikobakteri tüberkülozu (Ziehl-Nielsen), çeşitli bakteriler, mantarlar (metenamin gümüş, Gram) vb. için özel lekeler kullanılır.

Çeşitli akciğer hastalıklarında sitolojik tablodaki değişiklikleri doğru bir şekilde değerlendirmek için, ilk verileri - biyopsi materyalindeki epitelyal ve epitelyal olmayan hücrelerin sitolojik özelliklerini (Bölümdeki solunum sistemi hücrelerinin morfolojik özellikleri) açıkça anlamak gerekir. 1).

Epitel hücreleri, bronşların çok sıralı silindirik (prizmatik) epitel hücreleri, bronşiyollerin tek sıralı kübik epitel (Clara hücreleri) ve alveolar (solunum) epitel hücreleri ile temsil edilir.

Çok daha az sıklıkla, biyopside burun mukozası, farenks, trakea sütunlu epitelinin yanı sıra ağız boşluğunun mukoza zarının tabakalı skuamöz keratinize olmayan epiteli, bademcikler, nazofarenks, gırtlak, epiglot, ses telleri bulunur. malzeme (bkz. bölüm 28.1).

Bronş epitelinde üç tip hücre vardır: silindirik siliyer, kadeh ve bazal. Siliyer hücrelerin şekli cam üzerindeki konumlarına bağlı olarak üçgen, yuvarlak veya düzensiz olabilir. Silindirik hücreler cama dik kümeler halinde düzenlendiğinde, yuvarlak çekirdeklerin görülebildiği hücrelerde bal peteğine benzeyen ağ yapıları ortaya çıkar.

Enstrümantal materyaldeki epitelyumun germinal tabakasının hücreleri (bazal olarak adlandırılır), bir fırça ile kazıma sırasında bronşiyal mukozanın derin katmanları mekanik olarak hasar gördüğünde tespit edilir. Bu küçük (yaklaşık olarak bir lökosit boyutuna eşit) tekdüze, yuvarlak ve çokgen hücreler, nispeten büyük merkezi konumlu hiperkromik çekirdeğe ve dar, zar zor fark edilen bir sitoplazma kenarına sahip, bazen silyalı hücrelerle aynı kümede görülebilir.

Bronşçukların küboidal epitel hücreleri, çit şeklinde bir sıra şeklindeki karakteristik düzenlemeleriyle tanımlanır; küçük bir nükleolus ve hafif homojen sitoplazmaya sahip veziküler bir çekirdek tipiktir.

Alveolar epitel hücreleri (tip I ve II pnömositler) normalde bu şekilde tanımlanmaz. Smearlarda, çeşitli kökenlerden oluşan bir grup epitel kübik hücrede (bronşçuk epitelinin izole edilmiş hücreleri, kirpikleri kaybetmiş hücreler ve silindirik epitel sitoplazmasının bir kısmı) "kaybolurlar".

Epitelyal olmayan hücreler (histiositler, alveolar, makrofajlar, lökositler, plazma hücreleri, monositler, mast hücreleri, eritrositler, megakaryositler) ve ayrıca epitelyal olmayan yapılar (mukus, Courshman spiralleri, Charcot-Leyden kristalleri, iğne şeklindeki kolesterol kristalleri, amorf kireç kütleleri, asbest kütleleri) bölüm 28.1'de anlatılmıştır.

Enstrümantal materyalin sitolojik incelemesi sırasında ortaya çıkan değişikliklerin değerlendirilmesi, Akciğer Tümörlerinin Uluslararası Histolojik Sınıflandırması (WHO, 2. baskı, 1981), akciğer lezyonlarının sitolojik sınıflandırması (CMEA, 1983), hastalıkların ve patolojik durumların sınıflandırılması dikkate alınarak gerçekleştirilir. bronkopulmoner sistemin (N.V. Putov, G.B. Fedoseev, A.G. Khomenko, 1987 tarafından düzenlenmiş) "Göğüs Hastalıklarında El Kitabı".

Biyolojik patojenlerle ilişkili çeşitli akciğer hastalıklarında, kimyasal, fiziksel faktörlere, tümörlere vs. maruz kalma, hiperplazi, skuamöz metaplazi ve epitelyal hücrelerin dejenerasyonunu içeren bir stereotipik reaktif değişiklikler kompleksi meydana gelir (ayrıca bkz. Bölüm 2).

Bu değişiklikler belirli bir akciğer hastalığının doğrulanması için temel teşkil edemese de, bunların doğru değerlendirilmesi tanısal hataların ortadan kaldırılmasına yardımcı olur ve bazı durumlarda klinik verilerin yorumlanması için bir belirteç haline gelebilir ve kişinin muayene ve izleme için rasyonel taktikler seçmesine olanak tanır. hastalar.

Silindirik ve goblet hücrelerinin hiperplazisi. İlgili elemanların sayısında ve hacminde bir artış ile kendini gösterir. Çoğunlukla kronik bronşit, bronşektazi, bronşiyal astımda, daha az sıklıkla viral ve diğer akciğer hastalıklarında görülür. Kirpikli hücrelerin hiperplazisi, hücrelerin, çekirdeklerin, yaymalardaki nükleollerin boyutunda bir artış, iki, üç ve çok çekirdekli hücrelerin ortaya çıkması ve papiller birikimlerle kanıtlanır.

İkincisi, hiperkromatik çekirdeklere sahip aynı tip yuvarlak hücrelerden oluşur ve kısmen veya tamamen kübik (silindirik) epitel ile kaplanmıştır; Bireysel hücrelerde kütiküler bir sınır ve kirpikler vardır. Mitoz sayısındaki artış da hiperplazi belirtisidir.

Çok sayıda benzer çekirdeğe (20'ye kadar), büyük nükleollere ve bazofilik sitoplazmaya sahip çok sayıda çok çekirdekli bronşiyal epitel hücresinin ortaya çıkması, örneğin tekrarlanan bronkoskopiden sonra bronşiyal mukozanın "tahrişinin" bir göstergesi olarak kabul edilir.

Goblet hücresi hiperplazisi, sayılarındaki artış, kümelerin görünümü ve siliyer hücre hiperplazisine benzer belirtilerle gösterilir.

Hafif, orta veya şiddetli atipi ile siliyer ve goblet hücrelerinin hiperplazisi vardır. Hafif atipili hiperplazide, genişlemiş hücrelerde normal nükleer sitoplazmik oran korunur ve kromatin eşit şekilde ince tanelidir.

Orta dereceli atipili hiperplazide, tek tek hücrelerdeki nükleer sitoplazmik oran artar, hiperkromatik çekirdeklere ve genişlemiş nükleollere sahip hücreler ortaya çıkar, kromatin eşit şekilde ince tanelidir ve nükleer membranın konturları pürüzsüzdür.

Şiddetli atipili epitelyal hiperplazi (günümüzde bu tür değişikliklere daha sıklıkla şiddetli epitel displazisi adı verilmektedir), hücrelerin ve çekirdeklerin boyutundaki değişkenlik, ikincisinin açık bir şekilde artma eğilimi gösteren nükleer sitoplazmik oranı ve görünümü ile karakterize edilir. Bazen kalınlaşmış bir nükleer membrana sahip büyük hiperkromik çekirdekler, kaba kromatinin eşit olmayan dağılımı, nükleollerin genişlemesi.

Bazı durumlarda atipi belirtileri gösteren izole silindirik hücrelerin değerlendirilmesi zordur. Siliyer epitelyumun değişmemiş hücreleri arasındaki konumları kanser açısından endişe verici olmalıdır. Kirpikli epitel ile bağlantıları takip edilirse veya içlerinde kirpikler ve (veya) kütiküler bir sınır bulunursa, hücrelerin tümör olmayan doğası belirgin hale gelir.

Bazen çok çekirdekli bir hücrede, çekirdeklerin üst üste katmanlanması, kanser hücresinin çirkin çekirdeğine benzer şekilde hiperkromik bir kümelenmenin oluşmasına yol açar. Kromatinin ayırt edilemez yapısı, tekdüzeliği, grupların yokluğu, kümeler ve hücrelerin izolasyonu nedeniyle çekirdeklerin tekdüze boyanması, bir tümör tanısına karşı olduğunu gösterir.

Papiller epitel birikimlerinin (şiddetli atipi belirtileri ile) ve iyi diferansiye adenokarsinomun papiller komplekslerinin ayırıcı tanısında özel zorluklar ortaya çıkar. Epitelyal hiperplazi lehine kanıtlar, hücrelerin net bir şekilde korunması, pürüzsüz konturlara sahip koyu çekirdeklerin baskınlığı, bir kümede silindirik ve goblet hücrelerinin kombinasyonu, bazen kütikül içeren silindirik hücre sıralarının kümelerinin çevresi boyunca varlığıdır. sınır ve kirpikler, uydu hücre kümelerinin yokluğu, etrafta nekrotik kitleler, hücrelerin katmanlaşması, çekirdeklerin keskin polimorfizmi.

Bazal hücre hiperplazisi. Daha sıklıkla kronik akciğer hastalıklarında (bakteriyel ve mantar enfeksiyonları, bronşektazi, tüberküloz) ortaya çıkar. Smearlarda, bronşiyal mukoza ülsere olduğunda veya materyal elde etmek için invaziv enstrümantal yöntemler kullanıldığında (fırçayla kazıma, biyopsi parçalarının baskısı) bazal hücre birikimleri görülebilir.

Nispeten büyük hiperkromik, genellikle koyu renkli (ayırt edilemeyen kromatin yapısına sahip) çekirdeklere ve bitişik sitoplazmik yüzeylerde "fasetlere" sahip kompakt yerleşimli küçük hücre kümeleri, küçük hücreli karsinomdaki komplekslere benzer.

Bazal hücrelerin hiperplazisi, hücrelerin ve çekirdeklerin tek tip boyutu ve şekli, nükleer membranın eşit bir konturu, çekirdeklerin yoğun koyu renklenmesi ve sitoplazmanın bazofilisi, çevre üzerinde tek sütunlu epitel hücre kümelerinin varlığı ile kanıtlanır. bazen korunmuş kirpikler ile, kümelerdeki hücrelerin daha belirgin bir kompaktlığı ve hücrelerin yokluğu - uydular (kanserde hücreler genellikle gevşek bir şekilde yerleştirilir ve dış katmanların kompleksten ayrılma eğilimi vardır).

Bronşçukların ve alveollerin epitel hücrelerinin hiperplazisi.

Kronik akciğer hastalıklarında özellikle yara izini çevreleyen bölgelerde inflamasyonla birleşen fibroatelektazi alanlarında görülür. Düzleştirilmiş alveolar hücrelerin yerini kübik hücreler (alveoler metaplazi) alır, bronşiyollerin epitelyumu çok sıralı hale gelir ve bazen kübik hücrelerden küçük papillalar oluşur.

Smearlarda, daha sık olarak periferik bronşun kateterizasyonuyla elde edilen materyalde, belirli bir olasılıkla hiperplastik bronşiyol ve alveoler hücreler, bir palizat şeklinde sıra halinde yer alan kübik hücreleri, bazen eksantrik olarak yerleştirilmiş çekirdeğe sahip küçük yuvarlak hücre gruplarını ve bol miktarda bulunur. hafif, açıkça şekillendirilmiş sitoplazma.

Şiddetli atipili epitel hiperplazisi (kübik hücrelerin polimorfizmi, nükleer hiperkromatozis) ile grupları ve kümeleri bronşiyol-alveolar kanser hücresi komplekslerinden ayırt etmek zordur. Hiperplazi, içerdiği hücre sayısında önemli ölçüde değişiklik gösteren nadir kümeler, çekirdeklerin boyutunda ve şeklinde hafif dalgalanmalar, çok sayıda yuvarlak koyu çekirdek, nükleer membranın düzgün hatları; kümelerin çevresi boyunca çok çekirdekli hücrelerin ve uydu hücrelerinin yokluğu.

Kanserde ise tablo farklıdır: az sayıda hücre dahil olmak üzere aynı tipte çok sayıda kompleks; marjinal hücrelerin ayrılması; daha büyük nükleer polimorfizm, nükleer zarfın düzensiz konturu, iki ve çok çekirdekli hücreler, büyük nükleoller.

Bronşiyal epitelyumun skuamöz metaplazisinin temeli, kalınlaşmış epitel tabakasının silialardan yoksun birkaç kübik, çokgen hücre katmanından oluştuğu zaman, çok sıralı silindirik siliyer epitelyumun çok katmanlı skuamöz epitel ile bir geçiş değişiklikleri aşaması (geçiş metaplazisi) ile değiştirilmesidir. ve kütiküler bir sınır.

Skuamöz metaplazi insidansı özellikle 50 yaşın üzerindeki ağır sigara içenlerde yüksektir. Kronik akciğer hastalıkları skuamöz metaplazi gelişimine katkıda bulunur.

Siliyer hücre metaplazisinin ana sitolojik belirtisi, karakteristik silindirik şeklinin kaybıdır (hücreler yuvarlak, oval, çokgen hale gelir). Genellikle bazal hücrelerden daha büyüktürler ancak oral mukozanın skuamöz epitel hücrelerinden daha küçüktürler.

Çekirdekler nispeten büyük, yuvarlak, düzgün konturlu ve düzgün ince taneli kromatinlidir, tek nükleol içerir. Sitoplazma, bazal hücrelere göre daha belirgin, yarı saydam, bazofilik, bazen oksifilik, net hatlara sahiptir.

Metaplastik hücreler tek tek veya kümeler halinde bulunur. Bazen silindirik ve metaplastik hücreler bir kümede görülebilir. Metaplazi, kolumnar hücre kümesindeki düzleştirilmiş bir kenarla gösterilir. Küçük boyutlarda, küçük metaplastik hücreler olarak adlandırılan hücreler elipsoid veya oval bir şekle, açıkça konturlu asidofilik sitoplazmaya ve koyu çekirdeklere sahiptir.

Nükleer sitoplazmik oran silindirik hücrelere göre daha yüksektir. Hücreler küçük gruplar halinde yan yana bulunur, her çekirdek sitoplazmanın merkezinde “düzgün” bir şekilde yerleştirilmiştir.

Skuamöz hücreli karsinom hücrelerinden, özellikle aynı küme içinde, çekirdeklerin ve sitoplazmanın boyutu ve şeklindeki minimum değişkenlik, çekirdeklerin tabakalaşmasının olmaması, çekirdeklerin ve sitoplazmanın düzgün konturları, daha belirgin sitoplazma (küçükten fark) ile ayırt edilirler. hücreli karsinom), büyük çirkin hücrelerin yokluğu (skuamöz hücreli karsinomdan farkı).

Sitolojik inceleme sırasında metaplastik hücrelerin atipi derecesinin değerlendirilmesi önemlidir. Hafif atipi ile bireysel hücrelerde nükleer sitoplazmik oranda hafif bir artış gözlenir; metaplastik hücrelerin ve çekirdeklerin çoğunluğunun tekdüzeliği korunur.

Orta derecede atipi ile polimorfizm ve nükleer hiperkromatoz artar, ancak çekirdeklerin konturları ağırlıklı olarak pürüzsüzdür ve nükleer sitoplazmik oran kansere göre daha düşüktür. Şiddetli atipi ile (bu tür değişiklikler şu anda şiddetli epitelyal displazi olarak adlandırılmaktadır), birçok hücrede nükleer sitoplazmik oran keskin bir şekilde artar, polimorfizm artar (Şekil 28.1, a), kaba taneli kromatinli çekirdeklerin sayısı, tabakalı kümeler çekirdeklerin görünür olması, özellikle skuamöz hücreli karsinom komplekslerinden ayırt edilmesi zordur.

Metaplastik hücre kümelerindeki kanserin aksine, çekirdekler, nükleoller ve kromatin granülleri düzgün hatlara sahiptir, ayırt edilemeyen bir kromatin yapısına sahip koyu çekirdekler karakteristiktir, çok çekirdekli ve dev tuhaf hücrelerin yokluğu ve keratinizasyon belirtileri daha az sıklıkta görülür. Kanserde izole edilmiş tümör hücreleri komplekslerle birlikte görülebilir; Daha güçlü hücreler arası bağlantılar nedeniyle atipi belirtileri gösteren izole metaplastik hücreler nadirdir.

Enstrümantal materyali analiz ederken, hücrelerdeki distrofik ve otolitik değişiklikler nedeniyle sitogramın doğru değerlendirilmesi (balgam incelemesine göre daha az sıklıkla) zor olabilir. Silindirik hücrelerde distrofinin sık görülen belirtileri silia kaybı ve kütiküler sınırın tahrip olması, vakuolizasyon ve renk yoğunluğunun azalmasıdır.

bulanık konturlar veya sitoplazmanın tamamen yok edilmesi, “çıplak” çekirdeklerin ortaya çıkması. Bazen tam tersine sitoplazma opak görünür ve oksifilik renktedir. Çekirdeklerde, kromatin yapısı sıklıkla bozulur - polimorfik kaba kümelerden oluşan geniş bir döngü ağı, piknoz ve daha az sıklıkla - vakuolizasyon, reksis, lizis görülebilir).

Bronşiyal epitel hücrelerinin distrofisinin tuhaf bir şekli siliyositoftoryadır (Papanicolau G. N., 1963 tarafından önerilen bir terim). Bu durumda, siliyer hücrenin sitoplazmasının distal kısmı kırılır ve çekirdeksiz silyalı bir "püskül" oluşturur.

Sitoplazmanın geri kalan yuvarlak kısmı, sıklıkla reksisi anımsatan değişikliklere uğrayan çekirdeği içerir. Siliyositoforya daha çok viral hastalıklarda, bazen de kanser ve diğer akciğer lezyonlarında görülür.

Hiperplastik epitel hücrelerinde sitoplazmanın tahrip edilmesi, büyük "çıplak" çekirdeklerin ve küçük bir sitoplazma kenarı ile çekirdeklerin ortaya çıkmasına yol açar. Şiddetli çekirdek atipisi ile distrofik olarak değiştirilmiş kanser hücrelerinin komplekslerine benzer hücresel birikimler bulunur.

Bronş epitelindeki distrofik ve otolitik değişikliklerle ilişkili hataları dışlamak için, şu kurala uymak gerekir: belirli bir akciğer hastalığının varsayımı, "çıplak" çekirdeklerin veya belirsiz konturlara sahip epitelyal hücre birikimlerinin tespitine dayanamaz. çekirdekler ve sitoplazma; bu durumlarda çalışmanın tekrarlanması tavsiye edilir.

Akut inflamatuar hastalıklarda (bronşit, zatürre, apse), filamentli veya amorf nekrotik kitlelerin karışımından oluşan, korunmuş veya tahrip edilmiş polimorfonükleer lökositlerden oluşan pürülan eksüda genellikle aletler kullanılarak elde edilen materyalde bulunur; Epitelde reaktif değişiklikler gelişerek şiddetli atipi varlığında bir tümörü taklit eder ve bazı durumlarda hatalı sitolojik akciğer kanseri tanısına neden olur (aşağıya bakın). Bazen inflamatuar süreç tümörü maskeler.

Kronik inflamatuar hastalıklarda (kronik bronşit, pnömoni, apse), inflamatuar infiltrasyon hücreleri (polimorfonükleer lökositler, lenfositler, monositler, plazmasitler, makrofajlar, histiyositler) ve bronşiyal epitelyumun dökülmüş hücreleri, genellikle belirgin reaktif değişikliklerle birlikte çeşitli smearlarda bulunur. kombinasyonlar.

Goblet hücresi hiperplazisi genellikle kronik bronşitin, özellikle de bronşektazinin dolaylı bir belirtisidir. Smearlarda iltihaplanma sürecinin alevlenmesiyle birlikte polimorfonükleer lökositlerin ve dökülmüş epitel hücrelerinin sayısı artar ve makrofajların sayısı azalır; İyileşme ve remisyon sırasında ise tam tersi bir eğilim gözlenmektedir.

Tüberkülozun sitolojik tanısının temeli, enstrümantal olarak elde edilen materyalde mikobakteri tüberkülozunun daha az kesinlik derecesiyle saptanmasıdır - epiteloid hücrelerin ve dev çok çekirdekli Pirogov-Langhans hücrelerinin, nekrotik (kazlı) kitlelerin varlığı.

Sarkoidoz dokuda sarkoid granülomların oluşmasıyla karakterizedir. Sitolojik preparatlarda epiteloid ve çok çekirdekli dev hücreler sarkoidoz için patognomonik bulgular göstermez, bu nedenle tek başına sitolojik incelemeyle tüberküloz ile sarkoidoz arasında ayrım yapmak genellikle imkansızdır.

Ancak bazı durumlarda klinik radyolojik ve laboratuvar verileri dikkate alındığında sitolojik çalışmanın sonuçları tüberküloz veya sarkoidozu gösteren veriler olarak yorumlanabilir.

Sarkoidoz şu şekilde karakterize edilir:

• 1) "tipik" epiteloid hücrelerin ve histiyositlere ve monositlere benzeyen elemanların varlığıyla şekil ve boyutta epiteloid hücrelerin çekirdekleri ve sitoplazmasında daha fazla çeşitlilik;
• 2) net hatlara sahip bol miktarda ışık sitoplazması ve epiteloid hücrelerde daha yüksek PAS-pozitif madde konsantrasyonu;
• 3) çok çekirdekli hücrelerin çekirdeklerinin şekli ve boyutunda ve bunların yalnızca çevre boyunca değil, aynı zamanda sitoplazmanın orta kısımlarında da konumlarında daha belirgin değişkenlik (bu, iki tip dev hücrenin varlığı ile kendini gösterir, anımsatan “tipik” Pirogov-Langhans hücrelerinin ve yabancı hücrelerin çekirdeklerinin şekli ve konumu tel);
• 4) dev hücrelerin sitoplazmasında ara sıra lamel kristalli kalıntıların (Schaumann cisimcikleri) bulunması;
• 5) smearlerde kazeöz döküntünün olmaması (smearın “temiz” arka planı).

Bazen bronşlardan gelen materyalde tüberküloz veya sarkoid granülom unsurlarıyla birlikte tümör hücrelerine benzeyen epitelyal hücre birikimleri bulunur. Sarkoidozda bu tür birikimler genellikle reaktif olarak değiştirilmiş epitelyumun parçalarıdır. Tüberkülozlu hastalarda bu tür birikimleri değerlendirirken, tüberküloz ve akciğer kanserinin sıklıkla birlikte görüldüğü unutulmamalıdır.

Bazen, trakeal çatallanma alanından elde edilen materyalin sitolojik incelemesi, sitolojik tanının temeli olan Mikulicz hücrelerinin yaymalarında büyük (50-60 µm çapında, bazıları yukarı doğru) tespit edilen skleroma teşhisine yardımcı olur. 100-200 µm'ye kadar), yuvarlak, oval veya düzensiz şekilli, hafif vakuollü sitoplazmalı.

Çoğu hücrede çok sayıda küçük vakuol (çapı 1-5 µm) sitoplazmaya köpüklü bir görünüm verir (bal peteği şekilli sitoplazma), fakat aynı zamanda bir büyük (çapı 20 µm'ye kadar) vakuol de içerebilir.

Çekirdekler nispeten küçük, yuvarlaktır ve kromatin yapısı ince topaklıdır. Çoğunlukla çekirdekler piknotiktir ve eksantrik olarak konumlanmıştır; 1-2 nükleol görülebilir.

Skleroma tanısını koymak için fuksinofilik hiyalin toplarının (Roussell cisimcikleri) tanımlanması önemlidir. Frisch-Volkovich bakterileri bazen Mikulicz hücrelerinin sitoplazmasında görülebilir. Bronşlardan alınan materyalde genellikle kolumnar ve metaplastik skuamöz epitelyumun şiddetli displazisi ortaya çıkar.

Viral akciğer hastalıklarında sitolojik tablonun özellikleri, virüsün doğrudan sitopatojenik etkisine ve etkilenen dokunun (esas olarak mukoza zarının epitelyumuna) tepkisine bağlıdır. Sitopatojenik etki, hücre dejenerasyonu, hücreler arası bağlantıların zayıflaması, bronşiyal mukozanın epitel hücrelerinin ayrışması ve dökülmesi ve alveol lümeninde alveolar makrofajların birikmesi ile kendini gösterir.

Distrofik değişiklikler siliyositoftorya ile ifade edilir. Bazofilik kapanımların (virüsün mikrokolonileri ve etkilenen hücrenin RNA'sı) veya hafif bir çerçeveyle çevrelenmiş büyük oksifilik (eozinofilik, fuksinofilik) kapanımların sitoplazmasındaki görünümü, kısmi (lokal) bir dejenerasyon bölgesini yansıtır. Çekirdekte bazofilik ve oksifilik kapanımlar da gözlenir. Virüsün sitopatojenik etkisine epitelyal yanıt, hücre içi rejenerasyonun ve epitel hücrelerinin çoğalmasının artan süreçleriyle kendini gösterir.

Smearlarda listelenen hücre değişikliklerinin tespiti, hastalığın viral yapısını ortaya koymaya yardımcı olur. Klinik verilerle birlikte sitolojik tablonun özellikleri, buna neden olan virüsün alt tipini kabaca gösterebilir (grip, parainfluenza, solunum sinsityal, sitomegalovirüs, adenovirüs enfeksiyonu, vb.).

Özellikle, herpes simpleks virüsünün neden olduğu trakeobronşit ve pnömoni ile, çok çekirdekli dev hücreler, bir saat camı (bulanık kromatin granülleri ve daha koyu bir hipokromik orta kısım) görünümüne sahip genişlemiş çekirdeklere sahip smearlarda (Şekil 28.1, b) görülür. , net taslak); Karşılıklı basınç nedeniyle çekirdeklerin bitişik yüzeyleri genellikle uyumludur. Bazen çekirdekte büyük oksifilik kapanımlar görülebilir. Bu tür çekirdekler, kanser hücrelerinin çekirdeklerini taklit edebilir.

Akciğer kanserinden şüpheleniliyorsa aşağıdaki mikroskopi prensiplerine uyun. İlk olarak, herhangi bir polimorfik atipi belirtisi olarak kabul edilmesi gereken malignite belirtileri olan epitel hücrelerini ararlar (hücrelerin polimorfizmi, nükleoller, şekil ve boyuttaki kromatin kümelerinin yanı sıra çekirdeğin boyanma derecesi, konturu, nükleer -sitoplazmik oran vb.)

Epitel hücrelerinde bir malignite belirtileri kompleksinin varlığı, kanserin sitolojik tanısını koymayı mümkün kılar.
Hücresel, yapısal ve fonksiyonel farklılaşma belirtilerinin sıklığı ve şiddetinin değerlendirilmesine dayanarak tümörün şekli ve farklılaşma derecesi belirlenir.

Skuamöz hücreli ve glandüler kanserin yüksek derecede farklılaşmış varyantları (irrigasyonlu skuamöz hücreli karsinom, iyi farklılaşmış adenokarsinom), küçük hücreli karsinom, tanının güvenilir bir şekilde doğrulanmasını sağlayan oldukça bilgilendirici sitolojik belirtilere sahiptir.

Skuamöz hücreli karsinom ve adenokarsinomun daha az farklılaşmış varyantları (keratinizasyonsuz ve düşük dereceli farklılaşmalı skuamöz hücreli karsinom, orta ve düşük dereceli farklılaşmalı adenokarsinom) ve farklılaşmamış büyük hücreli karsinomun sitolojik olarak yalnızca biyopsi materyalinde ve yalnızca varsayımsal bir biçimde doğrulanır.

Keratinizasyonlu skuamöz hücreli karsinom (oldukça farklılaşmış bir varyant) karakteristik bir tabloya sahiptir: skuamöz hücre farklılaşması belirtilerinin çoğu açıkça ifade edilir. Ek olarak, hücrelerin keskin polimorfizmi (yuvarlak, çokgen, tuhaf bir şekilde raket, şerit, elips, kurbağa yavrusu şeklinde şekillendirilmiş; küçük, büyük, dev), kaba kromatinin eşit olmayan bir dağılımına sahip hiperkromik çekirdeklerin polimorfizmi oldukça bilgilendiricidir; çok çekirdeklilik, nispeten düşük nükleer sitoplazmik oran, çoğu çekirdekte nükleol yokluğu.

Keratinizasyonsuz skuamöz hücreli karsinomda (Şekil 28.1, e) (orta derecede farklılaşmış varyant), büyük yuvarlak ve poligonal kanser hücreleri, düzensiz şekilli genişlemiş nükleoller içeren merkezi olarak yerleştirilmiş büyük çekirdekler ve dar bir sitoplazma kenarı ile baskındır. Bu tür hücrelerin kompleksleri, bazen çeşitli hücreler arası köprülerle birlikte görülebilir. Keratinizasyon belirtisi yok.

Düşük farklılaşmalı skuamöz hücreli karsinomun tanısı, nispeten büyük merkezi yerleşimli çekirdeklere ve küçük bir sitoplazma kenarına sahip, küçük, yuvarlak, hafif polimorfik tümör hücrelerinin baskınlığına dayanır. Çevre boyunca tek uzun elemanlara sahip bu tür hücrelerin büyük kompleksleri karakteristiktir.

İyi farklılaşmış (asinöz, papiller) adenokarsinom. Açıkça ifade edilen glandüler farklılaşma belirtileri karakteristiktir. Ayrıca ince taneli kromatinin ve büyük nükleollerin düzgün dağılımı da bilgilendiricidir.

İyi farklılaşmış bir adenokarsinom türü bronşiyol-alveoler kanserdir. Smear'lar, eksantrik olarak yerleştirilmiş çekirdeklere sahip, genellikle 1-2 büyük nükleol (Şekil 28.1, e), aynı boyutta çok sayıda küçük glandüler benzeri (esas olarak papiller) kompleksler, belirgin mukus içeren monomorfik genişlemiş kübik ve silindirik kanser hücrelerinin varlığı ile karakterize edilir. oluşumu ve ara sıra psammöz kalkerli kütleler.

Orta derecede farklılaşmış (glandüler-katı) adenokarsinomda, izole edilmiş ve kompleksler oluşturan yuvarlak kanser hücrelerinin sayısında göreceli bir artış vardır. Düşük derecede farklılaşmaya sahip adenokarsinom, merkezi yerleşimli çekirdeklere sahip yuvarlak kanser hücrelerinin sitoplazmasında mukus tespit edilerek doğrulanır.

Küçük hücreli kanserin sitolojik tanısı için kriterler, nispeten küçük, hafif değişken büyüklükte, yuvarlak, nispeten büyük çekirdekli poligonal tümör hücrelerinin baskınlığı, kaba kromatinin eşit olmayan dağılımı, ayırt edilemeyen nükleoller, hücrelerde kompakt komplekslerin varlığıdır. sitoplazmanın görünmediği ve bitişik yüzeylerde “çıplak” “çekirdekler” “fasetler” oluşur (çöküntüler, çıkıntılar, düz alanlar şeklinde uyumlu konturlar).

Farklılaşmamış büyük hücreli karsinomda, büyük, merkezi olarak konumlanmış hiperkromik veya "kabarcık" çekirdeklere, çok sayıda büyük nükleollere ve ayrıca dev hücrelerin bir karışımına (% 12'den fazla) sahip büyük kanser hücrelerinin baskınlığı vardır.

Benign ve malign epitelyal olmayan akciğer tümörleri oldukça nadirdir. Diğerlerinden daha sık olarak fibroma, fibrosarkom, anjiyojenik ve leiomyosarkom ve malign lenfomalar (Hodgkin ve Hodgkin olmayan varyantlar) teşhis edilir.

Sitolojik tanı kriterleri, herhangi bir organdaki tümörlerin lokalizasyonuna benzer. Çoğu durumda akciğer tümörünün primer veya metastatik yapısının belirlenmesi yalnızca sitolojik, anamnestik ve klinik radyolojik verilerin kapsamlı bir şekilde değerlendirilmesi ile mümkündür.

Hamartom gibi tuhaf bir oluşumda karakteristik sitomorfolojik özellikler bulunur; burada aynı görüş alanlarında aynı kübik ve silindirik epitel hücrelerinin kıkırdak ve mukoza dokusu unsurları ile bir kombinasyonu gözlenir.
Bu bölüm, bir sitoloğun bronkopulmoner patolojisi olan hastalardan alınan biyopsi örneklerini incelerken karşılaştığı çeşitli tablolardan yalnızca bazılarını açıklamaktadır.

Akciğer hastalıklarının çok sayıda nozolojik formdan ayırıcı tanısında sitolojik yöntemin önemini göstermek için yalnızca ana formlar dikkate alınmış ve bunların sitolojik doğrulamasının destekleyici hükümleri verilmiştir.

Aynı zamanda, sitolojik yöntemin, ayrı ayrı ele alınan diğerleri gibi, tanı koymada önemli ancak kendi kendine yeterli bir rol oynamadığını vurgulamak önemlidir. Tanısal hataları önlemek için sitolojik incelemenin sonuçları, hastaların klinik, radyolojik, laboratuvar ve enstrümantal muayene verileriyle birlikte değerlendirilmelidir.

(Yunanca kytos - hücre, hücre) - hücre bilimi. Sitolojinin konusu yaşamın yapısal ve işlevsel birimi olarak hücredir. İÇİNDE görevler sitoloji, hücrelerin yapısı ve işleyişinin, kimyasal bileşimlerinin, bireysel hücresel bileşenlerin işlevlerinin, hücre üreme süreçlerinin bilgisinin, çevresel koşullara adaptasyonun, özel hücrelerin yapısal özelliklerinin incelenmesinin, oluşum aşamalarının incelenmesini içerir. özel fonksiyonları, spesifik hücresel yapıların gelişimi vb. Bunları çözmek için Sitolojideki problemleri çözmek için çeşitli yöntemler kullanılır.

Hücreleri incelemenin ana yöntemi ışık mikroskobudur. Küçük yapıları incelemek için optik aletler (mikroskoplar) kullanılır. Mikroskopların çözünürlüğü 0,13-0,20 mikrondur, yani. insan gözünün çözünürlüğünden yaklaşık bin kat daha yüksektir. Güneş ışığını veya yapay ışığı kullanan ışık mikroskoplarının yardımıyla hücrenin iç yapısına ilişkin birçok ayrıntıyı ortaya çıkarmak mümkündür: bireysel organeller, hücre zarı vb.

Hücresel yapıların ultra ince yapısı elektron mikroskobu kullanılarak incelenir. Işık mikroskoplarından farklı olarak elektron mikroskopları, ışık ışınları yerine elektron ışınını kullanır. Modern elektron mikroskoplarının çözünürlüğü 0,1 nm'dir, dolayısıyla çok küçük detayları ortaya çıkarabilirler. Bir elektron mikroskobu biyolojik zarları (kalınlık 6-10 nm), ribozomları (yaklaşık 20 nm çap), mikrotübülleri (kalınlık yaklaşık 25 nm) ve diğer yapıları gösterir.

Yöntemler, kimyasal bileşimi incelemek ve hücredeki bireysel kimyasal maddelerin lokalizasyonunu belirlemek için yaygın olarak kullanılmaktadır. sito- Ve histokimya reaktiflerin ve boyaların sitoplazmanın belirli kimyasal maddeleri üzerindeki seçici etkisine dayanır. Diferansiyel santrifüj yöntemi Bir santrifüj kullanılarak ayrıldıktan sonra hücre organellerinin kimyasal bileşimini ayrıntılı olarak incelemenizi sağlar. X-ışını kırınımı yöntemi hücresel yapıları oluşturan moleküllerin (örneğin DNA, proteinler) mekansal düzenini ve fiziksel özelliklerini belirlemeyi mümkün kılar.

Biyopolimer sentezi bölgelerinin lokalizasyonunu belirlemek, bir hücredeki madde transfer yollarını belirlemek ve tek tek hücrelerin migrasyonunu veya özelliklerini izlemek için yaygın olarak kullanılır. otoradyografi yöntemi- radyoaktif izotoplarla etiketlenmiş maddelerin kaydı. Hücrelerin birçok hayati süreci, özellikle hücre bölünmesi, kullanılarak kaydedilir. film- Ve fotoğrafçılık.

Bitki ve hayvanların organ ve doku hücrelerini, hücre bölünmesi süreçlerini, farklılaşmalarını ve uzmanlaşmalarını incelemek için kullanırlar. hücre kültürü yöntemi- Steril koşullar altında besin ortamında büyüyen hücreler (ve tek tek hücrelerden bütün organizmalar).

Canlı hücreleri incelerken ve bireysel organellerin fonksiyonlarını açıklarken, mikrocerrahi yöntemi- Bireysel organellerin çıkarılması veya implantasyonu, bunların hücreden hücreye nakli ve büyük makromoleküllerin hücreye sokulması ile ilişkili bir hücre üzerinde cerrahi etki.

Şu anda tıpta yaygın olarak kullanılmaktadır sitolojik araştırma yöntemleri Ve sitolojik teşhis Birçok hastalığın tanınması için.

Sitolojik tanı, normal koşullar altında ve çeşitli patolojik süreçlerde hem tek tek hücreleri hem de doku içindeki hücreleri içeren bir numunenin mikroskobik resminin yanı sıra hücresel ortamın incelenmesine dayanır.

Sitologlar önleyici çalışmalar yapar, ön tanı koyar ve tedavi sonuçlarını değerlendirir.

Onkolojide tümörleri tanımak için sitolojik çalışmalar kullanılır; hematolojide - hastalıkları teşhis etmek ve tedavilerinin etkinliğini değerlendirmek için; jinekolojide - kanser ve hormonal bozuklukların teşhisi amacıyla; Solunum sistemi, sindirim, idrara çıkma, sinir sistemi vb. ile ilgili birçok hastalığın tanınması için.

Valery Ivanovich Klyuchnikov, adını taşıyan Ulusal Tıp ve Cerrahi Merkezi'nde sitolog olarak çalışıyor. N.I.

Valery Ivanovich, günlük çalışmasının sonuçlarının bir kısmını sunarak, "Genellikle sitolojik smearların, baskıların, kazımaların, biyopsi ve delme sırasında elde edilen malzemelerin mikroskopisini kullanarak araştırma yapıyorum" diyor. "Mikrofotoğrafları trinoküler Mikromed-1, Altami USB 3150 R6 1/2 CMOS (3 Mpix) kamera ve elemanların ölçümüne uygun 2.0.0 programını kullanarak elde ediyorum."

Şekil 1. Glandüler epitel

Açık Şekil 1 Dini kanaldaki glandüler epitelyumun bir mikrografı sunulmaktadır. Glandüler epitel hücreleri eliptik şekillerde özetlenmiştir.

“Rahim ağzı kanalının yani rahim ağzı kanalının sitolojik çalışmaları prekanser ve rahim ağzı kanserini önlemek amacıyla yapılıyor. Bu mikrograf servikal kanaldaki normal glandüler epiteli gösteriyor, ancak bunun kötü lekelenmiş bir yayma örneği olduğuna inanıyorum. Eserlerin varlığı nedeniyle bundan herhangi bir sonuç çıkarmak imkansızdır. Buradaki eserler gevşek boya birikimleridir (fırça darbesi renklendirmesindeki kusurlar). Bunlar müdahale eden nesneler ve bazen analizin genel resmini bozuyorlar” diye açıklıyor Valery Ivanovich.

Normal proliferatif yayma tipine ilişkin bir çalışma aşağıda gösterilmiştir. şekil 2. Rahim ağzının dış yüzeyinden ve rahim ağzı kanalından (CC) smear alındı. "Burada küçük çekirdekli çok katmanlı skuamöz epitelyumun (MSE) yüzey hücrelerini ve CC'den büyük hiperkromik (yoğun) çekirdeklere sahip glandüler bir yapı (şerit) şeklinde glandüler epitel hücrelerinin birikimini görüyoruz. Bir programda Altami Stüdyo V.I.

Pirinç. 2. Glandüler epitel çekirdeğinin çapının ölçülmesi

Mikrograf açık Figür 3 rahim ağzının dış yüzeyinden proliferatif tipte bir smear görüntüsü ile. “Bu üreme (çocuk doğurma) çağındaki bir kadının normal bir lekesidir. Döngünün ilk aşamasında, olgun yüzey MSE hücrelerinin bolluğu ile karakterize edilir. Diğer durumlarda, bu tür smear bir patolojinin belirtisi olabilir. Mikrofotoğrafta küçük çekirdeklere sahip MSE hücreleri görülüyor ve ayrıca küçük çubuk mikroflorası da mevcut” diyor sitolog Valery Ivanovich.

Pirinç. 3. Proliferatif tip yayma

Proliferatif tipte bir yaymanın mikroskobik incelenmesi bazen servikal patolojinin viral yapısını teşhis etmeyi mümkün kılar ( Pirinç. 4). “Bu mikrografta normal vajinal çubuk mikroflorası gözlemliyorum, ancak perinükleer bir temizleme bölgesinin (koilositoz) oluşmasıyla birlikte tek tek hücrelerin çekirdeklerinde bir artış gözlemliyorum. Bu, insan papilloma virüsü enfeksiyonunun epitel hücrelerinde hasara yol açtığını gösteriyor” diye belirtiyor V. I. Klyuchnikov.

Pirinç. 4. İnsan papilloma virüsü enfeksiyonu (PVI)

Açık Şekil 5 Menopozdaki bir kadının rahim ağzının dış yüzeyinden alınan smearın mikrofotoğrafı sunulmaktadır. “Burada akut inflamasyon, yani atrofik kolpitis (vajinit) teşhisini doğrulayabilirim. Bu, bol miktarda lökosit birikimi ve hücre çekirdeğindeki artışla gösterilir. Altami Studio'da mikrofotoğraftan rastgele seçilen bir çekirdeğin çapı ölçüldü. Çapı 14,71 mikrondu,” diye yanıtlıyor katılımcımız.

Atrofik kolpitis, östrojen içeriğindeki önemli bir azalmanın neden olduğu ve tabakalı skuamöz epitelyumun incelmesine yol açan bir semptom kompleksidir.

Valery Ivanovich, "Sitolojik inceleme, atrofik kolpitisin objektif tanısı için ana yöntemlerden biridir" diyor.

Pirinç. 5. Atrofik kolpitis

Jinekolojik muayenelere ek olarak Valery Ivanovich tiroid nodüllerini teşhis ediyor ( Pirinç. 6). "Bu mikrofotoğrafta, tiroid bezinin (TG) epitelyumunun normal hücrelerini, onlar tarafından üretilen çözünebilir kolloid (sıkıştırılmış mukus benzeri bir madde) kütlesi içinde gözlemleyebiliyoruz. Alınan smear, vakuolizasyonu, yani sitoplazmada vakuol oluşumuyla karakterize edilen bir tür hücresel dejenerasyonu gösterir. Bu, hücrelerin metabolizmasında, işlevlerinde ve yapılarında çeşitli bozuklukların olduğunu gösteriyor” diyor Valery Ivanovich.

Tiroid bezinin kolloid guatr'ı iyot eksikliği sonucu gelişen bir hastalıktır. Nodül oluşumlarını önlemek için önlem olarak iyot ve vitamin tüketmek yeterlidir.

Pirinç. 6. Ağırlıklı olarak kolloid guatr

“Ben noktasaldan hazırlanan smearları da inceliyorum. Bir punktat, ince bir iğne ile delinerek çıkarılan az miktarda doku veya sıvıdır. Aşağıdaki mikrofotoğraf bir tiroid nodülündeki punktatların incelenmesini göstermektedir ( Pirinç. 7).

Bu durumda, küçük kümeler halinde monomorfik (tüm gelişim süresi boyunca aynı şekli koruyan) küçük A tipi tiroid hücrelerini temsil eder. Mikrofoliküler yapılar (çizgiler, rozetler) oluşturma eğilimi vardır, yani adenom şüphesi vardır.

Monomorfik bir adenom, basitçe söylemek gerekirse, bezin derinliklerinde yer alan tek, yoğun bir düğümdür.

Ancak bu tanıdan korkmaya gerek yok; tiroid adenomu iyi huylu bir tümördür ve nadiren kötü huylu hale gelir.”

Pirinç. 7. Tiroid adenomu

Sitoloji aynı zamanda endoskopi sırasında elde edilen materyallere dayanarak mideyi incelemek için de kullanılır ( Pirinç. 8). Mide epitel hücrelerinin çekirdeğinin çapı Altami Studio programında ölçüldü. V. I. Klyuchnikov, "Bunlar normal epitel hücreleridir, en büyük çekirdeklerden birinin çapı 54.7449 mikrondur" diye belirtiyor.

Pirinç. 8. Mideden alınan endoskopik materyal

“Kan elementlerini saymak, konsantrasyonlarını belirlemek ve hareketliliği belirlemek için kullanıyorum Goryaev'in kamerası(Şekil 9). Altami Studio programında kalibre edilmiştir. Goryaev'in kamerasını kullanarak mikroskobun büyütme oranını belirlemek benim için uygun. Bunu yalnızca kalibratör olarak kullanıyorum.”

Pirinç. 9. Goryaev'in kamerası

“Sitoloji oldukça karmaşık bir bilimdir ve dahası özneldir. Bu nedenle bir sitologun yalnızca uygun niteliklere sahip olması değil, aynı zamanda sitoloji alanında geniş deneyime de sahip olması gerekir," diye paylaşıyor Valery Ivanovich. “Rahim ağzının çeşitli durumlarını teşhis etmek, tiroid tümörlerini incelemek ve diğer önleyici muayeneler için sitolojik çalışmalara ihtiyaç vardır. Şu anda, tanınan ve yaygın olarak kullanılan sitolojik çalışmalar, nüfusun sağlığının güvence altına alınmasında büyük başarı elde ediyor" diyor sitolog Valery Ivanovich Klyuchnikov.

Sitolojik yöntem hücrelerin yapısının ve içlerindeki kimyasal süreçlerin özelliklerinin belirlenmesinden oluşur. Bu tür çalışmalar en yaygın olarak kanser öncesi aşama da dahil olmak üzere hücrelerin malign dejenerasyonunu tespit etmek, kan hastalıklarını teşhis etmek ve genitoüriner organ hastalıklarını tespit etmek için kullanılır.
Sitolojik inceleme materyali farklı şekillerde elde edilir. Bu nedenle, eksfolyatif yöntem, hastadan gelen biyolojik sıvıların (kan, balgam) çökeltilmesinden oluşur ve sonuç olarak tabakalaşır: plazma, kanın oluşturulmuş elementlerinden ayrılır ve balgamda mukus, epitel ve bakteriler çökelir. Kazıma veya yıkama, fistülden akıntı lekeleri, meme bezlerinin meme uçları vb. Kullanılarak araştırma için malzeme elde edilebilir. Daha sıklıkla, cilt hastalıklarının (kanser dahil) teşhisi için malzeme bu şekilde elde edilir.
Tiroid bezi, kemik iliği, beyin omurilik sıvısı, kistler, tümörler ve iç organların sitolojik incelemesi için hastadan delinerek materyal alınır. Bunu yapmak için bir iğne (enjeksiyon veya özel) ile bir delik açılır ve sıradan bir şırınga kullanılarak boşluk oluşumlarının sıvı içerikleri alınır. İç organlardan incelenmek üzere doku alınmasına özel aletlerle yapılan işleme biyopsi denir. Delinmeden sonra iğnenin veya biyopsi aletinin boşluğunda kalan sert doku parçacıkları da analiz edilebilir.
İnceleme için iç organlardan doku örnekleri endoskopik biyopsi kullanılarak alınabilir: fiber optik sistemli esnek bir cihaz ve kesici bir alet mide-bağırsak sistemine, bronşlara veya karın boşluğuna yerleştirilir. Daha sonra patoloji açısından en şüpheli yer seçilir ve birkaç doku kesiti alınır. Bu durumda şu kurala uyulur: İlk bölüm organın en çok değişen bölgesinde yapılır ve ardından bitişik alanlardan ve diğer lezyonlardan birkaç örnek daha alınır. Bu durumda yaralanan dokulardan kanama olması hatalı örneklemeye yol açmayacaktır.
Delinme ve biyopsi, araştırma için materyal toplamanın karmaşık yöntemleridir; genellikle oldukça acı vericidirler ve bu nedenle anestezi ile gerçekleştirilirler, ancak tanıdaki hataları en aza indirmeyi mümkün kılarlar.
Hem lekeli hem de sabit doku örnekleri ve canlı olanlar incelenir. Analiz mikroskopi ve kimyasal reaksiyonlar kullanılarak gerçekleştirilir. Elde edilen materyalin sitolojik incelemelerinin gerçekleştirilmesi oldukça hızlıdır ve intravital teşhislerle ilgilidir. En yaygın olarak kitlesel önleyici muayeneler sırasında kanseri ve kanser öncesi hastalıkları tespit etmek için kullanılırlar. Çalışma sırasında epitel hücrelerinin tipi, gelişim aşamaları ve içlerindeki patolojik değişiklikler belirlenir. Kanser öncesi hastalıkların veya kanserin dinamiklerinin erken dönemde tespiti ve gözlemlenmesi ancak bu yöntemle mümkündür.
Araştırma için hastadan materyal alma yöntemine bağlı olarak kötü huylu tümörün büyüklüğünü, işlemin kapsamını (organda kısmi, tam hasar, organı çevreleyen dokuya ve komşu organlara transfer) belirlemek mümkündür. . Sitolojik incelemenin yardımıyla, birincil tümörü, kanser hücrelerinin vücuda yayılmasının neden olduğu ikincil tümörden ayırmak mümkündür.
Materyalin kökenine ilişkin doğru veriler, özellikle birden fazla yerden alınmışsa sitolojik araştırmalar için büyük önem taşıyor. Bu nedenle, toplama sonrasındaki tüm lekeler ve kazıntılar doğru şekilde etiketlenmelidir (işaretler hem slaytta hem de beraberindeki belgelerde yapılmıştır). Birçok ilacın (hormonlar, sitostatikler) hücreler üzerinde doğrudan etkisi olduğundan ve durumlarını değiştirdiğinden, sitolojik bir çalışmanın güvenilir sonuçlarını elde etmek için yürütülen tedavi hakkında bilgi önemlidir. Ayrıca hastadan materyalin alınacağı yer yanlış seçilirse hastalık tespit edilemeyebilir. Analizin sonucu şüpheli ise, tekrar sitolojik inceleme yapılır.
Çalışma sırasında ortaya çıkan hücre malignitesi belirtileri:
1) belirli dokularda hücrelerin birbirine göre düzenindeki değişiklik (katmanlaşma, gruplaşma);
2) belirsiz sınırlar;
3) değiştirilmiş canlı ve ölü hücrelerin eşzamanlı varlığı;
4) hücre boyutunda değişiklik (azalma, artış);
5) hücre şeklindeki değişiklik;
6) yapıdaki hücrelerin çeşitliliği (incelenen materyal, çeşitli gelişim aşamalarındaki hücreleri, birçok olgunlaşmamış hücreyi içerir);
7) sitoplazmanın mavisini kimyasal boyalarla boyamak;
8) sitoplazmada çok sayıda vakuol ve katı kapanımın varlığı;
9) yapıdaki çekirdeklerin çeşitliliği;
10) çekirdek boyutunda artış;
11) çekirdek ve sitoplazma arasındaki hacim oranındaki değişiklik;
12) kromatinin eşit olmayan dağılımı;
13) kromatin yapısında değişiklik;
14) çekirdeklerin geliştirilmiş boyanması;
15) değişen derecelerde boyamaya sahip çekirdeklerin varlığı;
16) nükleollerin boyutunda ve sayısında artış;
17) mitoz (bölünme) durumundaki hücre sayısında artış;
18) Yanlış bölünen hücrelerin varlığı.